| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| 1 茯苓糖类物质研究进展 | 第14-20页 |
| ·茯苓资源研究概况 | 第14-15页 |
| ·茯苓糖类物质化学研究进展 | 第15-16页 |
| ·茯苓糖类物质生物活性研究进展 | 第16-17页 |
| ·茯苓多糖提制技术研究进展 | 第17-20页 |
| ·茯苓多糖提取技术研究进展 | 第17-19页 |
| ·茯苓多糖分离纯化技术研究进展 | 第19-20页 |
| ·茯苓多糖研究开发趋势 | 第20页 |
| 2 辐照降解植物多糖类物质研究进展 | 第20-24页 |
| ·辐照原理、优点及安全性 | 第20-21页 |
| ·辐照降解机制及影响因素 | 第21-22页 |
| ·辐照技术在降解植物多糖类物质中的应用 | 第22-24页 |
| 3 研究目的与意义 | 第24-25页 |
| 4 主要研究内容及技术路线 | 第25-27页 |
| ·主要研究内容 | 第25-26页 |
| ·技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 茯苓辐照降解理化效应研究 | 第27-47页 |
| 第一节 茯苓辐照降解微观效应研究 | 第27-37页 |
| 1 材料与方法 | 第27-30页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-35页 |
| ·茯苓辐照处理的微观结构分析 | 第30-32页 |
| ·茯苓辐照处理的水溶性糖含量分析 | 第32-33页 |
| ·茯苓辐照处理水溶液pH值分析 | 第33页 |
| ·茯苓辐照处理的紫外光谱分析 | 第33-35页 |
| ·茯苓辐照处理的红外吸收光谱分析 | 第35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| 第二节 茯苓辐照降解产物相对分子量与组成分析 | 第37-46页 |
| 1 材料与方法 | 第38-41页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第38-39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-45页 |
| ·茯苓辐照降解产物的相对分子量分析 | 第41-44页 |
| ·茯苓辐照降解产物的多糖组成分析 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45-46页 |
| 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 辐照-酶法协同降解茯苓多糖研究 | 第47-77页 |
| 第一节 茯苓水溶性多糖的不同提取方法比较研究 | 第47-57页 |
| 1 材料与方法 | 第47-49页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第47页 |
| ·试剂与仪器 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·检测方法 | 第49页 |
| ·计算方法 | 第49页 |
| ·统计分析方法 | 第49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-56页 |
| ·茯苓水溶性多糖不同提取方法的单因素实验结果与分析 | 第49-52页 |
| ·茯苓水溶性多糖不同提取方法的正交实验结果与分析 | 第52-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 第二节 不同生物酶制剂辅助提取茯苓水溶性多糖研究 | 第57-68页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第57-58页 |
| ·实验方法 | 第58-59页 |
| ·检测方法 | 第59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-66页 |
| ·β-葡聚糖酶辅助提取茯苓水溶性多糖技术参数优化 | 第59-63页 |
| ·植物复合酶SPE-002辅助提取茯苓水溶性多糖技术参数优化 | 第63-66页 |
| ·β-葡聚糖酶、植物复合酶SPE-002辅助提取茯苓水溶性多糖的验证实验结果与分析 | 第66页 |
| 3 讨论 | 第66-68页 |
| 第三节 酶法辅助降解辐照后茯苓多糖研究 | 第68-75页 |
| 1 材料与方法 | 第68-70页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第68-69页 |
| ·实验方法 | 第69-70页 |
| ·检测方法 | 第70页 |
| 2 结果与分析 | 第70-74页 |
| ·β-葡聚糖酶辅助降解辐照后茯苓多糖的单因素实验结果与分析 | 第70-72页 |
| ·β-葡聚糖酶辅助降解辐照后茯苓多糖的正交实验结果与分析 | 第72-74页 |
| ·β-葡聚糖酶辅助降解辐照后茯苓多糖的验证实验结果与分析 | 第74页 |
| 3 讨论 | 第74-75页 |
| 本章小结 | 第75-77页 |
| 第四章 茯苓辐照降解产物生物活性研究 | 第77-110页 |
| 第一节 茯苓辐照处理水提取物的体外抗氧化功能研究 | 第77-84页 |
| 1 材料与方法 | 第78-80页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第78-79页 |
| ·实验方法 | 第79-80页 |
| 2 结果与分析 | 第80-83页 |
| ·茯苓辐照处理水提取物的还原力分析 | 第80-81页 |
| ·茯苓辐照处理水提取物清除超氧阴离子自由基作用分析 | 第81-82页 |
| ·茯苓辐照处理水提取物清除羟基自由基作用分析 | 第82页 |
| ·茯苓辐照处理水提取物清除DPPH自由基作用分析 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-84页 |
| 第二节 茯苓辐照降解产物调节糖脂功能的高通量筛选研究 | 第84-90页 |
| 1 材料与方法 | 第85-87页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第85页 |
| ·实验方法 | 第85-87页 |
| 2 结果与分析 | 第87-89页 |
| ·样品对模型细胞SMMC-7721的毒性测试 | 第87页 |
| ·样品调节糖脂功能的核受体模型表征结果与分析 | 第87-89页 |
| 3 讨论 | 第89-90页 |
| 第三节 茯苓辐照降解产物调节血脂功能的细胞实验 | 第90-99页 |
| 1 材料与方法 | 第90-93页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第90-91页 |
| ·实验方法 | 第91-93页 |
| ·统计学分析 | 第93页 |
| 2 结果与分析 | 第93-97页 |
| ·非酒精性脂肪肝细胞模型的建立 | 第93-95页 |
| ·茯苓提取物样品添加浓度选择 | 第95-96页 |
| ·茯苓提取物样品对非酒精性脂肪变性肝细胞的干预作用 | 第96-97页 |
| 3 讨论 | 第97-99页 |
| ·非酒精性脂肪肝细胞模型的建立 | 第97-98页 |
| ·茯苓辐照处理提取物对脂肪变性肝细胞内的TG影响 | 第98-99页 |
| 第四节 茯苓辐照降解产物调节血糖功能的细胞实验 | 第99-108页 |
| 1 材料与方法 | 第99-103页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第99-100页 |
| ·实验方法 | 第100-103页 |
| ·统计学分析 | 第103页 |
| 2 结果与分析 | 第103-107页 |
| ·茯苓辐照处理提取物样品的蛋白质非酶糖基化实验结果分析 | 第104页 |
| ·茯苓辐照处理提取物样品的葡萄糖苷酶实验结果分析 | 第104页 |
| ·茯苓辐照处理提取物样品的醛糖还原酶实验结果分析 | 第104-105页 |
| ·茯苓辐照处理提取物样品的葡萄糖消耗实验结果分析 | 第105-107页 |
| ·茯苓辐照处理提取物样品的葡萄糖摄取实验结果分析 | 第107页 |
| 3 讨论 | 第107-108页 |
| 本章小结 | 第108-110页 |
| 第五章 茯苓辐照降解产物安全性评价 | 第110-119页 |
| 1 材料与方法 | 第110-112页 |
| ·材料、试剂与仪器设备 | 第110页 |
| ·实验方法 | 第110-112页 |
| ·统计分析方法 | 第112页 |
| 2 结果与分析 | 第112-118页 |
| ·小鼠急性毒性实验结果 | 第112页 |
| ·小鼠骨髓细胞微核实验结果分析 | 第112-113页 |
| ·小鼠精子畸形实验结果分析 | 第113页 |
| ·SD大鼠30天喂养实验结果 | 第113-118页 |
| 本章小结 | 第118-119页 |
| 全文总结 | 第119-122页 |
| 1 主要结论 | 第119-120页 |
| 2 主要创新点 | 第120-121页 |
| 3 展望 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-135页 |
| 缩写词 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 作者简介 | 第137页 |
