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猪卵母细胞向胚胎转换进程中α-Tubulin与H3S10ph的表达与功能研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
符号及缩略语第13-14页
绪论第14-15页
第一部分 文献综述第15-31页
    第一章 细胞骨架以及H3S10ph在卵母细胞向胚胎转化过程中的作用第15-31页
        1 卵母细胞向胚胎转化过程中细胞骨架的分布及功能第15-24页
            1.1 卵母细胞成熟分裂向胚胎有丝分裂转换进程第15-17页
            1.2 微管蛋白在卵母细胞向胚胎转换中的分布与功能第17-21页
            1.3 微丝蛋白在卵母细胞向胚胎转换进程中的分布及作用第21-24页
        2 染色体凝集与H3S10ph第24-31页
            2.1 染色体凝集第24-26页
            2.2 H3S10ph对有丝分裂过程中染色体凝集的调节机制第26-31页
第二部分 试验研究第31-79页
    第二章 猪卵母细胞减数分裂向胚胎有丝分裂转换过程中细胞骨架的动态分布第31-51页
        1 材料第33-38页
            1.1 主要仪器设备第33页
            1.2 主要试剂及药品第33-35页
            1.3 试剂配制第35-38页
        2 试验方法第38-40页
            2.1 猪卵母细胞采集与成熟培养第38-39页
            2.2 胚胎激活第39页
            2.3 间接免疫荧光染色第39页
            2.4 激光共聚焦显微镜观察第39-40页
            2.5 数据处理第40页
        3 结果第40-47页
            3.1 α-Tubulin与F-actin在猪卵母细胞成熟分裂进程中的动态表达第40-41页
            3.2 α-Tubulin与F-actin在猪胚胎首次有丝分裂进程中的动态表达第41-43页
            3.3 colchicine作用MI期猪卵母细胞对体外成熟以及纺锤体的影响第43-47页
        4 讨论第47-49页
            4.1 α-Tubulin在猪卵母细胞成熟分裂及胚胎有丝分裂进程中的动态表达第47-48页
            4.2 colchicine处理MI期猪卵母细胞对pbI排出与纺锤体组装的影响第48-49页
        5 小结第49-51页
    第三章 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph的定位与功能第51-67页
        1 试验材料第52-56页
            1.1 主要仪器设备第52页
            1.2 抗体与试剂第52-53页
            1.3 抗体和试剂配制第53-56页
        2 方法第56-61页
            2.1 猪卵母细胞培养第56-57页
            2.2 胚胎激活第57页
            2.3 AZD-1152处理猪胚胎细胞第57页
            2.4 间接免疫荧光染色第57-58页
            2.5 激光共聚焦显微镜观察第58页
            2.6 蛋白免疫印迹(Western Blotting)第58-61页
            2.7 免疫印迹蛋白强度分析第61页
            2.8 数据处理第61页
        3 结果第61-65页
            3.1 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph蛋白的动态表达第61-62页
            3.2 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph亚细胞定位第62-63页
            3.3 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph与α-tubulin的共定位第63-64页
            3.4 AZD-1152对猪胚胎首次有丝分裂的影响第64-65页
        4 讨论第65-66页
            4.1 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph表达与定位第65-66页
            4.2 AZD-1152对猪胚胎首次有丝分裂的影响第66页
        5 小结第66-67页
    第四章 猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph的调控机制第67-79页
        1 试验材料第68页
            1.1 主要仪器设备第68页
            1.2 抗体与试剂第68页
            1.3 试剂配制第68页
        2 方法第68-71页
            2.1 猪卵母细胞采集与成熟培养第68-69页
            2.2 胚胎激活第69页
            2.3 AZD-1152处理猪胚胎细胞第69页
            2.4 间接免疫荧光染色第69页
            2.5 激光共聚焦显微镜观察第69-70页
            2.6 蛋白免疫印迹(Western Blotting)第70-71页
            2.7 免疫印迹蛋白强度分析第71页
            2.8 数据处理第71页
        3 结果第71-76页
            3.1 AZD-1152对猪胚胎首次有丝分裂周期进程的影响第71-73页
            3.2 AZD-1152对猪胚胎首次有丝分裂过程中染色体凝集的影响第73-75页
            3.3 AZD-1152对猪胚胎首次有丝分裂过程中H3S10ph水平的影响第75-76页
        4 讨论第76-77页
        5 小结第77-79页
结论第79-81页
参考文献第81-91页
致谢第91-93页
攻读硕士学位期间论文发表情况第93页

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