| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-20页 |
| 1.1 miRNA研究进展 | 第9-14页 |
| 1.1.1 miRNA的发现 | 第9页 |
| 1.1.2 miRNA的生物合成 | 第9-10页 |
| 1.1.3 miRNA的作用机制 | 第10-11页 |
| 1.1.4 miRNA与生长发育 | 第11-13页 |
| 1.1.5 miRNA与逆境胁迫 | 第13-14页 |
| 1.2 miRNA沉默技术研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1 TM的原理与应用 | 第14页 |
| 1.2.2 STTM的原理与应用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 SP的原理与应用 | 第15-16页 |
| 1.3 miRNA介导的植物叶片发育的调控网络 | 第16-17页 |
| 1.4 miRNA介导的植物开花时间的调控网络 | 第17-18页 |
| 1.5 本研究的目的、意义和内容 | 第18-20页 |
| 第二章 拟南芥miR160和miR165/166互作网络的分析 | 第20-39页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-22页 |
| 2.1.1 植物材料和生长条件 | 第20页 |
| 2.1.2 拟南芥双突变体的构建和鉴定 | 第20-21页 |
| 2.1.3 总RNA提取和实时荧光定量PCR | 第21页 |
| 2.1.4 转录组和小RNA建库、测序及数据分析 | 第21-22页 |
| 2.1.5 干旱处理试验和激素含量测定 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-34页 |
| 2.2.1 拟南芥单、双突变体叶片发育的分析 | 第22-24页 |
| 2.2.2 拟南芥单、双突变体干旱耐性的分析 | 第24-25页 |
| 2.2.3 拟南芥单、双突变体的miRNA及靶基因的表达分析 | 第25-26页 |
| 2.2.4 拟南芥单、双突变体中miRNA的表达差异与功能 | 第26-29页 |
| 2.2.5 拟南芥单、双突变中基因的表达差异与功能 | 第29-32页 |
| 2.2.6 拟南芥单、双突变体中激素含量的变化及相关基因的差异 | 第32-34页 |
| 2.3 讨论 | 第34-37页 |
| 2.3.1 利用STTM技术研究植物中两个miRNA的互作 | 第34页 |
| 2.3.2 miR160介导的双突变体叶片发育差异的分子机制 | 第34-35页 |
| 2.3.3 miR165/166介导的双突变体干旱耐性差异的分子机制 | 第35页 |
| 2.3.4 miR160和miR165/166互作对IAA和ABA信号途径的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.5 miR160和miR165/166互作在作物农艺性状改良上的应用 | 第36-37页 |
| 2.4 主要结论和下一步计划 | 第37-39页 |
| 2.4.1 主要结论 | 第37-38页 |
| 2.4.2 下一步计划 | 第38-39页 |
| 第三章 玉米miR166作用机制的分析 | 第39-47页 |
| 3.1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 3.1.1 质粒、菌株和植物 | 第39页 |
| 3.1.2 玉米STTM166载体的构建 | 第39-40页 |
| 3.1.3 玉米STTM166转基因植株的表型筛选与分子鉴定 | 第40页 |
| 3.1.4 总RNA提取和实时荧光定量PCR | 第40页 |
| 3.1.5 转录组测序及数据分析 | 第40-41页 |
| 3.2 结果与分析 | 第41-44页 |
| 3.2.1 玉米STTM166的载体构建和遗传转化 | 第41页 |
| 3.2.2 玉米STTM166的阳性筛选与表型鉴定 | 第41-43页 |
| 3.2.3 玉米STTM166的转录组分析 | 第43-44页 |
| 3.3 讨论 | 第44-45页 |
| 3.3.1 利用STTM技术研究作物中单个miRNA的功能 | 第44-45页 |
| 3.3.2 玉米miR166沉默导致的叶片卷曲、开花延迟的调控路径预测 | 第45页 |
| 3.4 主要结论和下一步计划 | 第45-47页 |
| 3.4.1 主要结论 | 第45-46页 |
| 3.4.2 下一步计划 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 附表 | 第55-65页 |
| 附录 | 第65-71页 |
| 缩略词 | 第71-73页 |
| ABSTRACT | 第73-75页 |
