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舒尼替尼诱导肾癌细胞自噬的机理研究

摘要第4-6页
abstract第6-7页
引言第13-30页
    0.1 肾癌第13页
    0.2 舒尼替尼(Sunitinib,ST)第13页
    0.3 细胞死亡方式第13-21页
        0.3.1 细胞凋亡第13-15页
        0.3.2 细胞自噬第15-21页
            0.3.2.1 细胞自噬的简介第15-16页
            0.3.2.2 引起自噬的原因第16-18页
            0.3.2.3 自噬的分子机制第18-20页
            0.3.2.4 自噬与疾病第20-21页
        0.3.3 细胞坏死第21页
    0.4 Akt/mTOR信号通路第21-26页
    0.5 糖酵解第26-29页
        0.5.1 糖酵解概念第26页
        0.5.2 糖酵解的过程第26-29页
    0.6 课题研究的意义第29-30页
第一章 舒尼替尼(ST)引起肾癌细胞死亡方式分析第30-45页
    1.1 实验目的第30页
    1.2 实验方案第30页
    1.3 细胞株、药品试剂与仪器设备第30-33页
        1.3.1 实验细胞株及主要药品第30-31页
        1.3.2 实验试剂第31-32页
        1.3.3 试验仪器设备第32-33页
    1.4 基本实验方法第33-39页
        1.4.1 细胞复苏第33页
        1.4.2 细胞传代第33页
        1.4.3 细胞蛋白提取第33-34页
        1.4.4 免疫印迹检测第34-36页
        1.4.5 细胞冻存第36-37页
        1.4.6 MTS细胞活性检测实验第37页
        1.4.7 细胞克隆形成实验检测第37页
        1.4.8 电镜样品的制备第37页
        1.4.9 Real-timePCR检测第37-38页
        1.4.10 siRNA敲降技术第38-39页
    1.5 实验结果第39-43页
        1.5.1 舒尼替尼可以引起肾癌细胞活性的丢失第39-40页
        1.5.2 舒尼替尼可以通过多种途径引起细胞死亡第40-41页
        1.5.3 舒尼替尼可以诱导肾癌细胞产生自噬第41-42页
        1.5.4 舒尼替尼诱导的自噬与其诱导的凋亡之间关系第42-43页
    1.6 小结第43-45页
第二章 Akt/mTOR信号通路参与调控舒尼替尼诱导的细胞自噬第45-51页
    2.1 实验目的第45页
    2.2 实验方案第45页
    2.3 细胞株、药品试剂与仪器设备第45-46页
        2.3.1 实验细胞株及主要药品第45页
        2.3.2 试验试剂第45-46页
        2.3.3 仪器设备第46页
    2.4 基本实验方法第46页
    2.5 结果第46-50页
        2.5.1 舒尼替尼对Akt/mTOR信号通路上主要蛋白的表达情况第46-47页
        2.5.2 抑制mTOR和Akt影响舒尼替尼诱导的细胞自噬第47-48页
        2.5.3 敲降Akt不同亚基抑制舒尼替尼诱导的细胞自噬第48-50页
    2.6 小结第50-51页
第三章 抑制糖酵解途径扩大舒尼替尼对肾癌细胞的抑癌作用第51-57页
    3.1 实验目的第51页
    3.2 实验方案第51页
    3.3 细胞株、药品试剂与仪器设备第51-52页
        3.3.1 实验细胞株及主要药品第51页
        3.3.2 试验试剂第51-52页
        3.3.3 仪器设备第52页
    3.4 基本实验方法第52-53页
        3.4.1 腺病毒转染第52-53页
        3.4.2 Real-timePCR检测第53页
    3.5 结果第53-56页
        3.5.1 肾癌细胞中舒尼替尼处理后PFKFB3表达下降第53-54页
        3.5.2 PFKFB3抑制剂增加了舒尼替尼引起的细胞凋亡第54-55页
        3.5.3 糖酵解调节基因PFKFB3参与了舒尼替尼诱导的自噬第55-56页
    3.6 小结第56-57页
第四章 结论与展望第57-59页
致谢第59-60页
参考文献第60-68页
攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况第68-69页

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