| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-14页 |
| 1.1 肽类药物的研究进展 | 第8-11页 |
| 1.1.1 抗肿瘤药物研究的紧迫性 | 第8-9页 |
| 1.1.2 肽类化合物的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.2 抗肿瘤药物筛选的相关介绍 | 第11-13页 |
| 1.2.1 抗肿瘤药物筛选的历史以及现状 | 第11-13页 |
| 1.2.2 抗肿瘤药物体外筛选的特点 | 第13页 |
| 1.2.3 抗肿瘤药物筛选的趋势 | 第13页 |
| 1.3 本课题研究内容及意义 | 第13-14页 |
| 第2章 肿瘤与细胞凋亡 | 第14-18页 |
| 2.1 凋亡与肿瘤 | 第14页 |
| 2.2 凋亡的分子途径 | 第14-15页 |
| 2.3 细胞凋亡的机理 | 第15-18页 |
| 2.3.1 p53基因家族 | 第15页 |
| 2.3.2 Bcl-2家族 | 第15-16页 |
| 2.3.3 Caspase家族 | 第16-18页 |
| 第3章 肽类化合物体外抗肿瘤活性研究 | 第18-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第18-24页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第18页 |
| 3.1.2 肽类化合物 | 第18-23页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第23-24页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-28页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第24-25页 |
| 3.2.2 磺酰罗丹明B比色分析法测定肽类化合物对细胞的杀伤作用 | 第25-26页 |
| 3.2.3 50 μM肽类化合物对7种肿瘤细胞模型进行活性筛选 | 第26-27页 |
| 3.2.4 较高抑制率的肽类化合物的IC50测定 | 第27页 |
| 3.2.5 化合物XCS-5对B16细胞时间依赖性的测定 | 第27页 |
| 3.2.6 化合物XCS-5对正常大鼠心肌细胞H9c2生长的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.7 形态学检测 | 第28页 |
| 3.2.8 统计学分析 | 第28页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第28-49页 |
| 3.3.1 50 μM肽类化合物对7种肿瘤细胞的抑制活性测定 | 第28-35页 |
| 3.3.2 较高抑制率肽类化合物的IC50测定 | 第35-44页 |
| 3.3.3 化合物XC5对B16细胞的时间依赖性结果 | 第44-45页 |
| 3.3.4 化合物XCS-5对正常大鼠心肌细胞H9c2生长的影响结果 | 第45-46页 |
| 3.3.5 化合物XCS-5作用B16细胞的形态学观察 | 第46-48页 |
| 3.3.6 讨论 | 第48-49页 |
| 3.4 小结 | 第49-50页 |
| 第4章 化合物XCS-5对B16细胞作用机制的初步研究 | 第50-62页 |
| 4.1 实验材料 | 第50-52页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第50页 |
| 4.1.2 肽类化合物 | 第50页 |
| 4.1.3 主要仪器和设备 | 第50-51页 |
| 4.1.4 主要试剂 | 第51-52页 |
| 4.2 实验方法 | 第52-56页 |
| 4.2.1 流式细胞术AnnexinV-FITC/PI双染检测细胞凋亡 | 第52-53页 |
| 4.2.2 流式细胞术PI单染检测细胞周期 | 第53页 |
| 4.2.3 Western-Blot检测Caspase相关蛋白的表达 | 第53-56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-61页 |
| 4.3.1 AnnexinV-FITC/PI双染检测凋亡结果 | 第56-58页 |
| 4.3.2 PI单染细胞周期检测结果 | 第58-59页 |
| 4.3.3 WesternBlot检测caspase家族部分蛋白 | 第59页 |
| 4.3.4 讨论 | 第59-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-64页 |
| 附录 | 第64-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 攻读硕士学位期间所发表的论文 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
