| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 核糖核酸酶概述 | 第11-13页 |
| 1.2 核糖核酸酶检测方法的研究现状及应用 | 第13-20页 |
| 1.2.1 核糖核酸酶活性检测的传统分析方法 | 第13-16页 |
| 1.2.2 荧光探针法对核糖核酸酶的活性分析 | 第16-18页 |
| 1.2.3 核糖核酸酶在核酸检测中的应用 | 第18-20页 |
| 1.3 氧化石墨烯在生化分析中的应用 | 第20-25页 |
| 1.3.1 石墨烯和氧化石墨烯概述 | 第20页 |
| 1.3.2 氧化石墨烯的制备方法 | 第20页 |
| 1.3.3 氧化石墨烯在核糖核酸酶活性检测中的应用 | 第20-21页 |
| 1.3.4 氧化石墨烯在核酸检测中的应用 | 第21-25页 |
| 1.3.5 氧化石墨烯在细胞成像中的应用 | 第25页 |
| 1.4 本研究论文开展的工作内容 | 第25-27页 |
| 1.基于荧光纳米传感器的RNase A酶活性分析及靶向药物体内外筛选 | 第25-26页 |
| 2.基于rGO-DNAzyme和荧光探针检测RNaseH的活性及其抑制剂筛选 | 第26-27页 |
| 第2章 基于还原型氧化石墨烯和荧光探针灵敏检测RNaseA及其药物筛选 | 第27-41页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验原理与探针设计 | 第28页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第29-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-40页 |
| 2.3.1 rGO的表征 | 第31页 |
| 2.3.2 探针与rGO优化 | 第31-32页 |
| 2.3.3 反应缓冲液优化 | 第32-33页 |
| 2.3.4 反应温度优化 | 第33-34页 |
| 2.3.5 反应时间优化 | 第34页 |
| 2.3.6 RNase A实验 | 第34页 |
| 2.3.7 RNase A动力学分析 | 第34-35页 |
| 2.3.8 金属离子对RNase A的抑制作用 | 第35-36页 |
| 2.3.9 天然提取物对RNase A的影响 | 第36-38页 |
| 2.3.10 复杂生物样品中RNase A活性 | 第38-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 第3章 基于rGO和DNAzyme的荧光循环放大法检测RNase H及其活性药物 | 第41-53页 |
| 3.1 前言 | 第41-42页 |
| 3.2 实验部分 | 第42-44页 |
| 3.2.1 实验原理与探针设计 | 第42页 |
| 3.2.2 试剂和仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.3 试验方法 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-51页 |
| 3.3.1 不同底物链对RNaseH活性的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.2 rGO猝灭荧光探针的条件优化 | 第45页 |
| 3.3.3 反应条件优化 | 第45-47页 |
| 3.3.4 检测灵敏性分析 | 第47页 |
| 3.3.5 酶特异性分析 | 第47-48页 |
| 3.3.6 天然药物对RNase H活性影响 | 第48-51页 |
| 3.3.7 复杂生物样品中RNase H活性分析 | 第51页 |
| 3.4 小结 | 第51-53页 |
| 结论与展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-66页 |
| 附录 攻读硕士学位期间参与发表论文和专利 | 第66-67页 |
| 发表论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
