| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 缩略语表 | 第15-16页 |
| 第1章 前言 | 第16-36页 |
| 1.1 水稻田杂草发生情况 | 第16-18页 |
| 1.2 水稻田杂草治理 | 第18-19页 |
| 1.3 ACCase抑制剂类除草剂 | 第19-22页 |
| 1.4 ACCase抑制剂的作用机理 | 第22-25页 |
| 1.4.1 ACCase概述 | 第22-23页 |
| 1.4.2 ACCase抑制剂作用位点 | 第23-25页 |
| 1.5 杂草对ACCase抑制剂抗性现状 | 第25-27页 |
| 1.6 杂草对ACCase抑制剂抗性机理 | 第27-31页 |
| 1.6.1 杂草对ACCase抑制剂靶标抗性机理 | 第27-30页 |
| 1.6.2 杂草对ACCase抑制剂非靶标抗性机理 | 第30-31页 |
| 1.7 杂草对除草剂的交互抗性与多抗性 | 第31-33页 |
| 1.7.1 ACCase基因突变抗性杂草对除草剂的交互抗性 | 第31-32页 |
| 1.7.2 代谢抗性杂草对除草剂的交互抗性与多抗性 | 第32-33页 |
| 1.8 低剂量除草剂施用加速杂草抗性进化 | 第33-34页 |
| 1.9 抗ACCase抑制剂杂草的适合度代价 | 第34页 |
| 1.10 研究目的和意义 | 第34-36页 |
| 第2章 湖北省稻田稗草对噁唑酰草胺的抗性水平 | 第36-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-40页 |
| 2.1.1 供试杂草 | 第36页 |
| 2.1.2 试验药剂及试剂 | 第36-39页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第39页 |
| 2.1.4 生物活性测定方法 | 第39页 |
| 2.1.5 数据统计分析 | 第39-40页 |
| 2.2 结果与分析 | 第40-45页 |
| 2.2.1 稗草对噁唑酰草胺的抗性水平及变化趋势 | 第40-44页 |
| 2.2.2 抗噁唑酰草胺稗草种群对其他三种除草剂的交互抗性 | 第44页 |
| 2.2.3 噁唑酰草胺及其他三种除草剂对稗草毒力的相关性分析 | 第44-45页 |
| 2.3 讨论 | 第45-47页 |
| 第3章 不同剂量噁唑酰草胺对稗草抗性进化的影响 | 第47-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47-50页 |
| 3.1.1 供试杂草 | 第47页 |
| 3.1.2 稗属杂草形态学鉴定 | 第47-48页 |
| 3.1.3 供试药剂及试剂 | 第48页 |
| 3.1.4 仪器设备 | 第48页 |
| 3.1.5 不同剂量噁唑酰草胺处理 | 第48-49页 |
| 3.1.6 稗草对噁唑酰草胺的剂量反应研究 | 第49页 |
| 3.1.7 交互抗性 | 第49页 |
| 3.1.8 数据分析 | 第49-50页 |
| 3.2 结果与分析 | 第50-55页 |
| 3.2.1 稗属杂草鉴定分析 | 第50页 |
| 3.2.2 不同剂量噁唑酰草胺对稗草抗性进化的影响 | 第50-53页 |
| 3.2.3 抗噁唑酰草胺稗草种群对其它除草剂的交互抗性 | 第53-55页 |
| 3.3 讨论 | 第55-58页 |
| 第4章 噁唑酰草胺与稗草ACCaseCT功能域的相互作用 | 第58-82页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58-68页 |
| 4.1.1 供试杂草 | 第58-59页 |
| 4.1.2 供试药剂及试剂 | 第59页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第59-60页 |
| 4.1.4 稗草叶绿体透射电镜观察 | 第60页 |
| 4.1.5 噁唑酰草胺对稗草ACCase抑制活性 | 第60-61页 |
| 4.1.6 稗草质体ACCaseCT功能域基因测序 | 第61-66页 |
| 4.1.6.1 总RNA提取及第一链cDNA合成 | 第61-63页 |
| 4.1.6.2 引物设计 | 第63页 |
| 4.1.6.3 PCR扩增 | 第63-64页 |
| 4.1.6.4 PCR扩增产物测序 | 第64-66页 |
| 4.1.7 稗草CT功能域同源建模及其与噁唑酰草胺分子对接 | 第66-67页 |
| 4.1.8 复合三维结构CT-metamifop的分子动力学 | 第67页 |
| 4.1.9 噁唑酰草胺与稗草CT功能域结合自由能计算(MM/GBSA) | 第67-68页 |
| 4.1.10 噁唑酰草胺噁唑环上氮原子的质子化 | 第68页 |
| 4.2 结果与分析 | 第68-79页 |
| 4.2.1 噁唑酰草胺对稗草叶绿体显微结构的影响 | 第68-69页 |
| 4.2.2 噁唑酰草胺对ACCase活性的影响 | 第69-70页 |
| 4.2.3 稗草质体ACCaseCT功能域基因及系统发育分析 | 第70-71页 |
| 4.2.4 噁唑酰草胺与稗草CT功能域的相互作用 | 第71-79页 |
| 4.3 讨论 | 第79-82页 |
| 第5章 稗草对噁唑酰草胺的抗性机理 | 第82-116页 |
| 5.1 材料与方法 | 第82-96页 |
| 5.1.1 供试杂草 | 第82-83页 |
| 5.1.2 供试药剂及试剂 | 第83页 |
| 5.1.3 仪器设备 | 第83-84页 |
| 5.1.4 稗草CT功能域基因序列测序 | 第84-86页 |
| 5.1.4.1 稗草总RNA提取 | 第84-85页 |
| 5.1.4.2 第一链cDNA合成 | 第85页 |
| 5.1.4.3 引物设计 | 第85-86页 |
| 5.1.4.4 PCR扩增及测序 | 第86页 |
| 5.1.5 代谢酶活性测定 | 第86-87页 |
| 5.1.5.1 GSTs活性测定 | 第86-87页 |
| 5.1.5.2 P450s活性测定 | 第87页 |
| 5.1.5.3 蛋白含量测定 | 第87页 |
| 5.1.6 代谢酶抑制剂对抗噁唑酰草胺稗草的增效作用测定 | 第87页 |
| 5.1.7 转录组测序 | 第87-90页 |
| 5.1.7.1 样品准备 | 第88页 |
| 5.1.7.2 总RNA提取 | 第88页 |
| 5.1.7.3 RNA质量检测 | 第88-89页 |
| 5.1.7.4 文库构建 | 第89-90页 |
| 5.1.7.5 测序 | 第90页 |
| 5.1.8 转录组测序数据分析 | 第90-96页 |
| 5.1.8.1 分析流程 | 第90-91页 |
| 5.1.8.2 测序数据质量控制 | 第91-92页 |
| 5.1.8.3 转录本拼接 | 第92-94页 |
| 5.1.8.4 Corset层次聚类 | 第94页 |
| 5.1.8.5 基因功能注释 | 第94页 |
| 5.1.8.6 基因表达水平分析 | 第94页 |
| 5.1.8.7 差异表达分析 | 第94-95页 |
| 5.1.8.8 差异基因GO富集分析 | 第95页 |
| 5.1.8.9 差异基因KEGG富集分析 | 第95-96页 |
| 5.2 结果与分析 | 第96-113页 |
| 5.2.1 稗草CT功能域基因序列分析 | 第96-97页 |
| 5.2.2 代谢酶活性差异 | 第97-98页 |
| 5.2.3 代谢酶抑制剂对抗性稗草种群抗性逆转作用 | 第98-100页 |
| 5.2.4 抗性相关候选基因分析 | 第100-113页 |
| 5.2.4.1 测序数据质量及拼接 | 第100-101页 |
| 5.2.4.2 基因功能注释 | 第101-105页 |
| 5.2.4.3 基因表达水平分析 | 第105页 |
| 5.2.4.4 抗噁唑酰草胺稗草与敏感稗草的差异表达基因 | 第105-107页 |
| 5.2.4.5 抗噁唑酰草胺稗草与敏感稗草的差异基因功能 | 第107-110页 |
| 5.2.4.6 抗性稗草代谢噁唑酰草胺可能的途径及抗性候选基因的表达模式 | 第110-113页 |
| 5.3 讨论 | 第113-116页 |
| 第6章 总结与展望 | 第116-118页 |
| 6.1 总结 | 第116-117页 |
| 6.2 创新点 | 第117页 |
| 6.3 展望 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-134页 |
| 附录 | 第134-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
