摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第一章 绪论 | 第11-34页 |
1.1 甲壳素与壳聚糖 | 第11-12页 |
1.2 壳聚糖的基本性质 | 第12-20页 |
1.2.1 壳聚糖的物理性质 | 第13-15页 |
1.2.2 壳聚糖的化学性质 | 第15-20页 |
1.3 壳聚糖微球的制备方法 | 第20-26页 |
1.4 壳聚糖的生物应用 | 第26-30页 |
1.4.1 载药粒子药物的释放机理 | 第27页 |
1.4.2 结肠靶向给药 | 第27-28页 |
1.4.3 癌症治疗 | 第28-29页 |
1.4.4 生物经皮给药 | 第29-30页 |
1.4.5 载药生物组织工程材料 | 第30页 |
1.5 羧甲基纤维素的概述 | 第30-31页 |
1.5.1 羧甲基纤维素的基本物性 | 第30-31页 |
1.5.2 羧甲基纤维素在生物上的应用 | 第31页 |
1.6 本课题研究的目的及主要内容 | 第31-34页 |
1.6.1 本课题研究目的与意义 | 第31-32页 |
1.6.2 本课题研究的主要内容 | 第32-33页 |
1.6.3 本课题研究的创新之处 | 第33-34页 |
第二章CS/CMC复合凝胶微球的制备与表征 | 第34-58页 |
2.1 引言 | 第34-35页 |
2.2 实验原料与仪器 | 第35-36页 |
2.3 实验部分 | 第36-40页 |
2.3.1 壳聚糖分子量的测定 | 第36页 |
2.3.2 壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第36-37页 |
2.3.3 壳聚糖/羧甲基纤维素复合凝胶微球的制备 | 第37-38页 |
2.3.4 壳聚糖/羧甲基纤维素复合凝胶微球正交实验 | 第38-40页 |
2.4 测试与表征 | 第40-41页 |
2.4.1 红外光谱测试 | 第40页 |
2.4.2 X-射线衍射测试 | 第40页 |
2.4.3 扫描电镜分析(SEM) | 第40页 |
2.4.4 尺寸测定 | 第40-41页 |
2.4.5 形貌观察 | 第41页 |
2.5 结果与讨论 | 第41-56页 |
2.5.1 傅立叶红外光谱(FTIR)分析 | 第41-43页 |
2.5.2 X-射线衍射分析 | 第43-45页 |
2.5.3 扫描电子显微镜分析 | 第45-47页 |
2.5.4 壳聚糖/羧甲基纤维素凝胶小球各因素分析 | 第47-54页 |
2.5.5 壳聚糖/羧甲基纤维素凝胶微球正交实验分析 | 第54-56页 |
2.6 CS/CMC复合微球性能表征 | 第56-57页 |
2.7 本章小结 | 第57-58页 |
第三章CS/CMC复合凝胶微球的药物释放性能研究 | 第58-73页 |
3.1 引言 | 第58页 |
3.2 实验原料与仪器 | 第58-60页 |
3.3 实验部分 | 第60-64页 |
3.3.1 CS/CMC装载BSA凝胶微球的制备 | 第60页 |
3.3.2 包药率和载药率的测定 | 第60-62页 |
3.3.3 BSA释放性能的研究 | 第62-64页 |
3.4 结果与讨论 | 第64-72页 |
3.4.1 标准曲线的绘制 | 第64-67页 |
3.4.2 CS/CMC复合凝胶微球中BSA的体外释放研究 | 第67-72页 |
3.5 本章小结 | 第72-73页 |
第四章 离子凝胶法制备装载LARGAZOLE壳聚糖微球及体外释放动物实验的研究 | 第73-86页 |
4.1 引言 | 第73页 |
4.2 实验原料与仪器 | 第73-75页 |
4.3 实验部分 | 第75-77页 |
4.3.1 装载Largazole壳聚糖微球的制备 | 第75页 |
4.3.2 EAU感应实验和评分 | 第75-76页 |
4.3.3 Largazole标准曲线的绘制 | 第76页 |
4.3.4 包药率和载药率的测定 | 第76-77页 |
4.4 结果与讨论 | 第77-85页 |
4.4.1 标准曲线的绘制 | 第77页 |
4.4.2 不同浓度的药物比对包封率和载药率的影响 | 第77-79页 |
4.4.3 不同浓度的药物比对粒径和多分散性的影响 | 第79-80页 |
4.4.4 不同浓度的药物比对药物体外释放行为的影响。 | 第80-82页 |
4.4.5 不同浓度的药物比对带病小鼠的EAU动物实验 | 第82-83页 |
4.4.6 延迟型超敏反应和T细胞活性分析 | 第83-85页 |
4.5 本章小结 | 第85-86页 |
结论与展望 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-98页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第98-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
附件 | 第100页 |