| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 引言 | 第18-20页 |
| 第一章 结肠癌肝转移细胞的提取与病理学特性研究 | 第20-28页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.1 仪器 | 第20页 |
| 1.1.2 试剂 | 第20页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第20-21页 |
| 1.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第21页 |
| 1.2.2 结肠癌肝转移动物模型建立 | 第21页 |
| 1.2.3 肝转移肿瘤细胞分离提取 | 第21页 |
| 1.2.4 肿瘤细胞表面α_5β_1整合素及肿瘤转移相关蛋白表达量测定 | 第21-22页 |
| 1.2.5 肿瘤细胞迁移能力评价 | 第22页 |
| 1.2.6 肿瘤细胞侵袭能力评价 | 第22页 |
| 1.2.7 肝转移灶肿瘤细胞增殖能力的体内评价 | 第22-23页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第23-26页 |
| 1.3.1 肝转移肿瘤细胞表面α_5β_1整合素表达量的测定 | 第23-24页 |
| 1.3.2 肝转移灶肿瘤细胞迁移能力评价 | 第24页 |
| 1.3.3 肝转移灶肿瘤细胞侵袭能力评价 | 第24-25页 |
| 1.3.4 肝转移灶肿瘤细胞增殖能力的体内评价 | 第25-26页 |
| 1.3.5 肝转移灶肿瘤细胞MMP-9、VEGF蛋白表达量测定 | 第26页 |
| 1.4 本章小结 | 第26-28页 |
| 第二章 多肽修饰的壳聚糖硬脂酸嫁接物的合成及理化性质研究 | 第28-38页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.1 仪器 | 第28页 |
| 2.1.2 试剂 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 壳聚糖硬脂酸嫁接物(CSOSA)合成 | 第29页 |
| 2.2.2 多肽修饰的壳聚糖硬脂酸嫁接物(RPM-CSOSA)合成 | 第29-30页 |
| 2.2.3 RPM-CSOSA嫁接物结构确证 | 第30页 |
| 2.2.4 嫁接物氨基取代度测定 | 第30页 |
| 2.2.5 嫁接物临界胶束浓度测定 | 第30-31页 |
| 2.2.6 嫁接物胶束粒径、表面电位测定及透射电镜观察 | 第31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-37页 |
| 2.3.1 RPM-CSOSA嫁接物的合成及结构确证 | 第31-34页 |
| 2.3.2 嫁接物的氨基取代度 | 第34页 |
| 2.3.3 嫁接物临界胶束浓度 | 第34-35页 |
| 2.3.4 嫁接物粒径,表面电位测定及透射电镜观察 | 第35-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 多肽修饰壳聚糖硬脂酸嫁接物纳米给药系统制备及理化性质研究 | 第38-45页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第38-39页 |
| 3.1.1 仪器 | 第38页 |
| 3.1.2 试剂 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 碱基阿霉素制备 | 第39页 |
| 3.2.2 阿霉素纳米给药系统的制备 | 第39页 |
| 3.2.3 姜黄素纳米给药系统的制备 | 第39-40页 |
| 3.2.4 纳米给药系统的粒径与表面电位 | 第40页 |
| 3.2.5 阿霉素纳米给药系统的载药量与包封率 | 第40页 |
| 3.2.6 姜黄素纳米给药系统的载药量与包封率 | 第40-41页 |
| 3.2.7 纳米给药系统体外药物释放动力学 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 3.3.1 纳米给药系统制备 | 第41-42页 |
| 3.3.2 纳米给药系统的粒径与表面电位 | 第42页 |
| 3.3.3 纳米给药系统包封率与载药量 | 第42-43页 |
| 3.3.4 纳米给药系统药物释放动力学 | 第43-44页 |
| 3.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 多肽修饰纳米给药系统体外抗结肠癌肝转移药效学研究 | 第45-58页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第45-46页 |
| 4.1.1 仪器 | 第45页 |
| 4.1.2 试剂 | 第45-46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-49页 |
| 4.2.1 CSOSA和RPM-CSOSA胶束的细胞摄取 | 第46-47页 |
| 4.2.2 RPM-CSOSA胶束的竞争性摄取 | 第47页 |
| 4.2.3 RPM-CSOSA胶束的特异选择性摄取 | 第47页 |
| 4.2.4 DOX和CUR体外最佳协同比例的筛选 | 第47-48页 |
| 4.2.5 纳米给药系统的细胞毒性评价 | 第48页 |
| 4.2.6 纳米给药系统抑制肿瘤细胞周期评价 | 第48-49页 |
| 4.2.7 纳米给药系统抑制HUVEC细胞迁移能力的评价 | 第49页 |
| 4.2.8 纳米给药系统抑制HT29细胞侵袭能力的评价 | 第49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 4.3.1 CSOSA和RPM-CSOSA胶束的细胞摄取 | 第49-51页 |
| 4.3.2 RPM-CSOSA胶束的竞争性摄取 | 第51页 |
| 4.3.3 RPM-CSOSA胶束的特异选择性摄取 | 第51-52页 |
| 4.3.4 DOX和CUR体外最佳协同比例的筛选 | 第52页 |
| 4.3.5 纳米给药系统的细胞毒性评价 | 第52-54页 |
| 4.3.6 纳米给药系统抑制肿瘤细胞周期评价 | 第54页 |
| 4.3.7 纳米给药系统抑制HUVEC细胞迁移能力的评价 | 第54-55页 |
| 4.3.8 纳米给药系统抑制HT29细胞和HUVEC细胞侵袭能力的评价 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第五章 多肽修饰纳米给药系统体内抗结肠癌肝转移动物药效学研究 | 第58-65页 |
| 5.1 仪器与试剂 | 第58-59页 |
| 5.1.1 仪器 | 第58页 |
| 5.1.2 试剂 | 第58-59页 |
| 5.1.3 实验动物 | 第59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 5.2.1 CSOSA和RPM-CSOSA胶束的肝转移灶分布 | 第59页 |
| 5.2.2 RPM多肽修饰的纳米给药系统抗结肠癌肝转移的模型动物药效学研究 | 第59-60页 |
| 5.2.3 结肠癌肝转移灶免疫组化评价 | 第60页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第60-63页 |
| 5.3.1 CSOSA和RPM-CSOSA胶束的肝转移灶分布 | 第60-62页 |
| 5.3.2 多肽修饰纳米给药系统抑制结肠癌肝转移的模型动物药效学研究 | 第62页 |
| 5.3.3 结肠癌肝转移组织形态学观察 | 第62-63页 |
| 5.3.4 结肠癌肝转移灶血管免疫组化 | 第63页 |
| 5.4 本章小结 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 文献综述 | 第72-88页 |
| 参考文献 | 第81-88页 |
| 作者简历 | 第88页 |
