| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表(Abbreviations) | 第8-11页 |
| 文献综述 | 第11-21页 |
| 1 小麦受到的主要胁迫 | 第11页 |
| 2 植物对高光胁迫的防御系统 | 第11-13页 |
| 3 高等植物光系统Ⅱ的研究进展 | 第13-21页 |
| 3.1 PSⅡ的结构与功能 | 第14-15页 |
| 3.2 胁迫对PSⅡ蛋白水平的影响 | 第15页 |
| 3.3 胁迫与PSⅡ蛋白可逆磷酸化 | 第15-19页 |
| 3.3.1 可逆磷酸化与PSⅡ的修复 | 第15-17页 |
| 3.3.2 可逆磷酸化与状态迁移 | 第17-19页 |
| 3.4 胁迫与光化学效率 | 第19页 |
| 3.5 植物激素与抗逆性 | 第19-21页 |
| 第一章 小麦光合机构对高光高温双重胁迫的响应 | 第21-41页 |
| 1 前言 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-29页 |
| 2.1 材料及处理 | 第23页 |
| 2.2 叶绿素含量、叶片水分状态以及可溶性蛋白含量 | 第23-24页 |
| 2.3 膜脂过氧化物及电渗率的测定 | 第24页 |
| 2.4 叶绿素荧光及光合速率测定 | 第24-25页 |
| 2.5 活性氧的测定 | 第25-27页 |
| 2.5.1 超氧阴离子含量测定 | 第25-26页 |
| 2.5.2 过氧化氢含量的测定 | 第26页 |
| 2.5.3 活性氧染色 | 第26-27页 |
| 2.6 抗氧化酶活性的测定 | 第27页 |
| 2.7 类囊体膜蛋白的提取 | 第27-28页 |
| 2.8 类囊体蛋白电泳、免疫杂交及蓝绿温和电泳 | 第28页 |
| 2.9 数据处理 | 第28-29页 |
| 3 实验结果 | 第29-39页 |
| 3.1 高光高温双重胁迫下小麦叶绿素含量、相对含水量及总蛋白含量变化 | 第29页 |
| 3.2 高光高温双重胁迫下小麦活性氧的聚集及膜脂过氧化物的产生 | 第29-31页 |
| 3.3 高光高温双重胁迫下小麦抗氧化酶活性变化 | 第31-32页 |
| 3.4 高光高温双重胁迫对小麦PSⅡ光合特性的影响 | 第32-34页 |
| 3.5 高温高光双重胁迫对小麦类囊体蛋白含量的影响 | 第34-36页 |
| 3.6 高温高光双重胁迫对小麦PSⅡ-LHCⅡ超复合物结构与PSⅡ蛋白可逆磷酸化的影响 | 第36-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第二章 水杨酸对高温强光胁迫的调节作用 | 第41-50页 |
| 1 前言 | 第41页 |
| 2 材料与方法 | 第41-42页 |
| 2.1 材料与处理 | 第41-42页 |
| 2.2 实验方法 | 第42页 |
| 2.3 数据处理 | 第42页 |
| 3 实验结果 | 第42-47页 |
| 3.1 SA对高光高温双重胁迫下小麦叶绿素、相对含水量及总蛋白含量的影响 | 第42-43页 |
| 3.2 SA对高光高温双重胁迫下小麦活性氧的积累及膜脂过氧化物的影响 | 第43-45页 |
| 3.3 SA对高光高温双重胁迫下小麦抗氧化酶活性的影响 | 第45-46页 |
| 3.4 SA对高光高温双重胁迫下小麦PSⅡ光合特性的影响 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 硕士期间发表的文章 | 第59页 |
