| 缩略语表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 文献回顾 | 第15-35页 |
| T细胞和移植排斥反应 | 第15-19页 |
| Notch 信号途径 | 第19-22页 |
| Notch 对造血干细胞发育和维持内稳态作用 | 第22-24页 |
| Notch与T细胞发育 | 第24-27页 |
| Notch对外周T细胞的分化和功能的影响 | 第27-30页 |
| Notch信号与Th1细胞 | 第30-31页 |
| Notch与Th2细胞 | 第31-32页 |
| Notch信号和Th17细胞以及调节性T细胞 | 第32-33页 |
| 小结 | 第33-35页 |
| 实验一 在同种异体移植免疫中外周T细胞NOTCH信号分析 | 第35-42页 |
| 1 材料 | 第35-37页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·试剂 | 第35-36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| ·Real-time PCR引物 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-39页 |
| ·实验分组 | 第37页 |
| ·皮片移·植 | 第37-38页 |
| ·分离受体小鼠脾脏T 淋巴细胞 | 第38页 |
| ·Q-PCR 检测Notch 信号上下游分子 | 第38-39页 |
| 3 结果 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 实验二 RBP-J 条件性基因小鼠的培育鉴定及其外周淋巴细胞分析 | 第42-51页 |
| A. 材料 | 第42-45页 |
| ·实验动物 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42-44页 |
| ·仪器 | 第44页 |
| ·引物 | 第44-45页 |
| 2. 方法 | 第45-47页 |
| ·培育并鉴定小鼠基因型 | 第45-46页 |
| ·外周淋巴细胞分析 | 第46-47页 |
| 3. 结果 | 第47-49页 |
| ·小鼠基因型鉴定结果 | 第47-48页 |
| ·外周淋巴细胞分析 | 第48-49页 |
| 4. 讨论 | 第49-51页 |
| 实验三 受体条件性阻断T 细胞NOTCH 信号对移植物及T 淋巴细·胞 | 第51-67页 |
| 1. 材料 | 第51-53页 |
| ·实验动物 | 第51页 |
| ·试剂 | 第51-52页 |
| ·仪器 | 第52-53页 |
| 2. 方法 | 第53-56页 |
| ·实验分组 | 第53页 |
| ·皮片移植 | 第53页 |
| ·心脏移植 | 第53-54页 |
| ·受体外周T 淋巴细胞亚群增殖的检测 | 第54-55页 |
| ·外周血液中Th 细胞亚群动态监测 | 第55页 |
| ·脾脏及淋巴T 细胞分析 | 第55页 |
| ·胞内细胞因子染色 | 第55-56页 |
| ·HE 染色 | 第56页 |
| 3. 结果 | 第56-64页 |
| ·存活时间 | 第56-57页 |
| ·移植物病理切片HE 染色 | 第57-58页 |
| ·脾脏和引流淋巴结细胞分析 | 第58-61页 |
| ·BrdU检测细胞增殖情况 | 第61-62页 |
| ·辅助性T 细胞（Th）检测 | 第62-64页 |
| 4. 讨论 | 第64-67页 |
| 实验四 体外混合淋巴细胞培养分析NOTCH 信号对T 细胞增殖及TREG 功能影响 | 第67-72页 |
| 1. 材料 | 第67-68页 |
| ·实验动物 | 第67页 |
| ·试剂 | 第67-68页 |
| ·仪器 | 第68页 |
| 2. 方法 | 第68-69页 |
| ·混合淋巴细胞培养（MLR） | 第68-69页 |
| ·stimulator 细胞制备 | 第68页 |
| ·效应T 细胞获取 | 第68页 |
| ·调节性T 细胞分离 | 第68页 |
| ·效应性T细胞CFSE标记 | 第68-69页 |
| ·混合淋巴细胞培养 | 第69页 |
| ·体外增殖实验 | 第69页 |
| 3. 结果 | 第69-71页 |
| ·Tregs 的抑制功能实验 | 第69页 |
| ·Teff 的增殖实验 | 第69-71页 |
| 4. 讨论 | 第71-72页 |
| 小结 | 第72页 |
| 展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-86页 |
| 附录 | 第86-88页 |
| 个人简历和研究成果 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
