| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-19页 |
| 第一部分 | 第15-16页 |
| 研究现状、成果 | 第15-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16页 |
| 第二部分 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、分子分型与乳腺癌复发与治疗的回顾性研究 | 第19-34页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-22页 |
| 1.1.1 材料 | 第19页 |
| 1.1.2 临床病理学特征评估 | 第19-20页 |
| 1.1.3 实验所用试剂及仪器 | 第20页 |
| 1.1.4 免疫组织化学染色 | 第20-22页 |
| 1.1.5 统计学方法 | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-29页 |
| 1.2.1. 免疫组化结果评判与乳腺癌分型 | 第22-24页 |
| 1.2.2. 分子分型与复发危险因素 | 第24-27页 |
| 1.2.3. 分子分型与治疗 | 第27-29页 |
| 1.3 讨论 | 第29-33页 |
| 1.3.1 分子分型的流行病学情况 | 第29-30页 |
| 1.3.2 乳腺癌分子分型与复发 | 第30页 |
| 1.3.3 luminalA亚型与Ki-67 | 第30-31页 |
| 1.3.4 分子分型与放疗、内分泌治疗 | 第31页 |
| 1.3.5 乳腺癌分子分型与化疗 | 第31-32页 |
| 1.3.6 组化研究分子分型的局限性与不足 | 第32-33页 |
| 1.4 小结 | 第33-34页 |
| 二、Nek2B在体内外的不同表达：紫杉醇的抗药性和对乳腺癌的潜在治疗作用 | 第34-67页 |
| 2.1 对象和方法 | 第34-52页 |
| 2.1.1 细胞培养相关实验方法 | 第34-35页 |
| 2.1.2 PCR检测 | 第35-38页 |
| 2.1.3 Western Blot检测 | 第38-41页 |
| 2.1.4 流式细胞术 | 第41-42页 |
| 2.1.5 免疫荧光双染色 | 第42页 |
| 2.1.6 重组并转染质粒DNA | 第42-48页 |
| 2.1.7 siRNA转染 | 第48页 |
| 2.1.8 克隆形成实验 | 第48-49页 |
| 2.1.9 裸鼠成瘤实验 | 第49-52页 |
| 2.1.10 MTT实验 | 第52页 |
| 2.1.11 统计方法 | 第52页 |
| 2.2 结果 | 第52-60页 |
| 2.2.1 Nek2蛋白及Nek2B mRNA在MCF10细胞系中的表达 | 第52-53页 |
| 2.2.2 Nek2B质粒DNA转染MCF10A与MCF10AT及影响 | 第53-55页 |
| 2.2.3 Nek2B siRNA转染MCF10DCIS.com与MCF10 CA1a以及影响 | 第55-57页 |
| 2.2.4 Nek2B siRNA与紫杉醇对MCF10A1a成瘤裸鼠的作用 | 第57-59页 |
| 2.2.5 Nek2B mRNA的表达与乳腺癌患者的抗药性 | 第59-60页 |
| 2.3 讨论 | 第60-66页 |
| 2.3.1 乳腺癌的发生发展模式的建立 | 第60-61页 |
| 2.3.2 中心体异常与Nek2B | 第61-63页 |
| 2.3.3 Nek2B在MCF10细胞系中的表达 | 第63页 |
| 2.3.4 Nek2B质粒DNA以及siRNA转染 | 第63-64页 |
| 2.3.5 Nek2B siRNA在成瘤裸鼠中的应用 | 第64-65页 |
| 2.3.6 Nek2B与新辅助化疗 | 第65-66页 |
| 2.4 小结 | 第66-67页 |
| 全文结论 | 第67-69页 |
| 论文创新点 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 | 第78-104页 |
| 染色体不稳定分子机制与乳腺癌研究的新进展 | 第78-104页 |
| 综述参考文献 | 第97-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
