| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-28页 |
| 1.1 植物的生长发育时期及茎顶端分生组织结构 | 第11-13页 |
| 1.2 拟南芥生长发育阶段的划分 | 第13-14页 |
| 1.3 拟南芥的五种开花途径 | 第14-16页 |
| 1.4 植物时相转变的研究进展 | 第16-21页 |
| 1.4.1 拟南芥营养生长时相转变的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4.2 拟南芥晚花突变体营养生长时相转变的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4.3 光周期对植物生长发育的影响 | 第19页 |
| 1.4.4 光周期途径中晚花突变体对植物营养生长时相转变的影响 | 第19-20页 |
| 1.4.5 光周期与赤霉素调控的关系 | 第20-21页 |
| 1.5 拟南芥时相转变的相关基因 | 第21-26页 |
| 1.5.1 miR156调控拟南芥的时相转变 | 第22-24页 |
| 1.5.2 miR172调控拟南芥的时相转变 | 第24-26页 |
| 1.6 本课题的研究目的和意义 | 第26-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-37页 |
| 2.1 试剂材料与相关软件网站 | 第28-30页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂及配制方法 | 第28-29页 |
| 2.1.3 实验设备 | 第29页 |
| 2.1.4 常用生物信息学网站和分析软件 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-37页 |
| 2.2.1 植物种植条件和生长观测方法 | 第30页 |
| 2.2.2 不同浓度的赤霉素处理材料 | 第30-31页 |
| 2.2.3 石蜡切片的制作 | 第31-32页 |
| 2.2.4 半定量RT-PCR | 第32-35页 |
| 2.2.4.1 总RNA的提取与检测 | 第32-33页 |
| 2.2.4.2 总RNA中DNA的消除 | 第33页 |
| 2.2.4.3 总RNA的反转录 | 第33-34页 |
| 2.2.4.4 RT-PCR | 第34-35页 |
| 2.2.5 qRT-PCR | 第35-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-49页 |
| 3.1 野生型和晚花突变体的植株形态 | 第37页 |
| 3.2 野生型和晚花突变体的生长周期 | 第37-38页 |
| 3.3 野生型和晚花突变体的叶片形态变化 | 第38-41页 |
| 3.4 野生型和晚花突变体近轴面表皮毛数目的统计 | 第41-43页 |
| 3.5 不同浓度赤霉素处理野生型和晚花突变体的效果 | 第43-44页 |
| 3.6 石蜡切片分析野生型和晚花突变体SAM的变化 | 第44-46页 |
| 3.7 RT-PCR及qRT-PCR分析野生型和晚花突变体植株中miR156和SPL3的表达量 | 第46-49页 |
| 4 讨论 | 第49-54页 |
| 4.1 远轴面表皮毛与营养生长时相转变的关系 | 第49-50页 |
| 4.2 赤霉素促进拟南芥营养生长时相转变和生殖生长时相转变 | 第50-51页 |
| 4.3 miR156和SBP家族基因共同调节营养生长时相转变 | 第51-52页 |
| 4.4 拟南芥晚花突变co-2和ft-1延迟营养生长时相转变 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-65页 |
| 附录 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
