| 前言 | 第4-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 英文缩写词表 | 第17-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-34页 |
| 1.1 恶性脑胶质瘤的分级、发病机制和治疗现状 | 第18-19页 |
| 1.2 肿瘤的表观遗传学研究 | 第19-20页 |
| 1.3 溴结构域、BET家族及Brd4 | 第20-27页 |
| 1.3.1 溴结构域 | 第20页 |
| 1.3.2 BET家族的成员及生物功能 | 第20-21页 |
| 1.3.3 Brd4的生理功能 | 第21-22页 |
| 1.3.4 Brd4溴结构域与组蛋白相互作用 | 第22-23页 |
| 1.3.5 BET与非组蛋白间的相互作用 | 第23-25页 |
| 1.3.6 信号通路调控 | 第25-27页 |
| 1.4 BET小分子抑制剂 | 第27-34页 |
| 1.4.1 BET小分子抑制剂的概述及分类 | 第27-28页 |
| 1.4.2 BET小分子抑制剂在多种癌症中的作用 | 第28-32页 |
| 1.4.3 其他作用 | 第32-34页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第34-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第34-36页 |
| 2.1.1 所用细胞株 | 第34页 |
| 2.1.2 主要实验仪器与设备 | 第34-35页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第35-36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-46页 |
| 2.2.1 细胞培养方法 | 第36页 |
| 2.2.2 CCK8法检测JQ1对CSC1589细胞增殖能力的影响 | 第36页 |
| 2.2.3 细胞生长计数检测JQ1对CSC1589细胞增殖能力的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.4 神经球成球能力实验检测JQ1对CSC1589细胞自我更新能力的影响 | 第37-38页 |
| 2.2.5 Annexin V-FITC流式细胞术检测JQ1对CSC1589细胞凋亡的影响 | 第38页 |
| 2.2.6 PI流式细胞术检测JQ1对CSC1589细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| 2.2.7 q-PCR方法检测肿瘤细胞中Brd4及相关基因的m RNA表达 | 第39-41页 |
| 2.2.8 Western blot检测蛋白表达情况 | 第41-43页 |
| 2.2.9 免疫荧光染色 | 第43-44页 |
| 2.2.10 Hoechst染色方法 | 第44-45页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第45-46页 |
| 第三章 实验结果 | 第46-55页 |
| 3.1 JQ1抑制CSC1589细胞增殖和自我更新能力 | 第46-48页 |
| 3.1.1 CCK8检测JQ1对CSC1589细胞增殖的影响 | 第46-47页 |
| 3.1.2 细胞生长计数法检测JQ1对CSC1589细胞增殖的影响 | 第47页 |
| 3.1.3 神经球成球能力实验检测JQ1对CSC1589细胞自我更新能力的影响 | 第47-48页 |
| 3.2 JQ1对于CSC1589细胞凋亡的影响 | 第48-50页 |
| 3.2.1 Annexin V-FITC流式细胞术检测JQ1对CSC1589细胞凋亡的影响 | 第48-50页 |
| 3.2.2Hochest染色检测JQ1对CSC1589细胞凋亡的影响 | 第50页 |
| 3.3 JQ1对于CSC1589细胞周期的影响 | 第50-51页 |
| 3.4 JQ1对于CSC1589细胞干细胞活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.5 JQ1对CSC1589细胞c-Myc基因、凋亡和周期相关基因m RNA表达水平的影响 | 第52-53页 |
| 3.6 JQ1对CSC1589细胞C-Myc基因和凋亡相关基因蛋白表达水平的影响 | 第53-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-59页 |
| 第五章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
