| 英汉缩略语名词对照 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 材料和方法 | 第16-27页 |
| 1. 材料 | 第16-18页 |
| 1.1 细胞株和实验动物 | 第16页 |
| 1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.4 主要溶剂的配置 | 第18页 |
| 2. 方法 | 第18-27页 |
| 2.1 细胞分组 | 第18-20页 |
| 2.2 RT-PCR方法检测HT29细胞中GOLPH3 m RNA的表达 | 第20-21页 |
| 2.3 MTT法检测各组细胞的增殖 | 第21-22页 |
| 2.4 平板克隆形成实验 | 第22页 |
| 2.5 瘤球形成实验 | 第22页 |
| 2.6 Annexin V-FITC/PI流式细胞技术检测各组细胞的凋亡 | 第22-23页 |
| 2.7 Western Blot检测各组细胞的GOLPH3、P-gp、β-catenin、ERK1/2、pERK1/2 蛋白的表达 | 第23-25页 |
| 2.8 裸鼠成瘤实验 | 第25-26页 |
| 2.9 统计学方法 | 第26-27页 |
| 结果 | 第27-39页 |
| 1. HT29结肠癌细胞转染效果检测 | 第27-29页 |
| 1.1 转染组HT29细胞GOLPH3表达检测 | 第27-28页 |
| 1.2 转染组HT29细胞增殖及成瘤能力检测 | 第28页 |
| 1.3 转染组HT29细胞凋亡检测 | 第28-29页 |
| 2.GOLPH3基因参与HT29细胞对顺铂化疗耐药的研究 | 第29-34页 |
| 2.1 不同浓度顺铂处理对HT29细胞中GOLPH3、P-gp、β-catenin、pERK1/2 蛋白表达的影响 | 第29-31页 |
| 2.2 在顺铂处理条件下，MTT检测沉默GOLPH3对HT29细胞增殖的影响 | 第31页 |
| 2.3 在顺铂处理条件下，克隆形成实验检测沉默GOLPH3对HT29细胞增殖能力的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 在顺铂处理条件下，瘤球形成实验检测沉默GOLPH3对HT29细胞成瘤能力的影响 | 第32-33页 |
| 2.5 在顺铂处理条件下，Annexin V-FITC/PI流式细胞实验检测沉默GOLPH3对HT29细胞凋亡的影响 | 第33-34页 |
| 3. GOLPH3基因参与HT29细胞对顺铂化疗耐药的机制探讨 | 第34-36页 |
| 3.1 在顺铂处理条件下，Western Blot实验检测沉默GOLPH3对相关蛋白表达的影响 | 第34-36页 |
| 3.2 在顺铂处理条件下，Western Blot实验检测阻断MAPK/ERK信号通路对相关蛋白的影响 | 第36页 |
| 4. 动物成瘤实验验证沉默GOLPH3可提高HT29细胞对顺铂的敏感性 | 第36-39页 |
| 讨论 | 第39-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 综述 | 第52-64页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
