摘要 | 第5-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
1 绪论 | 第15-37页 |
1.1 引言 | 第15-16页 |
1.2 配位聚合物 | 第16-27页 |
1.2.1 配位聚合物的分类 | 第17-19页 |
1.2.1.1 氰基桥联配位聚合物 | 第17-18页 |
1.2.1.2 含羧基配体的配位聚合物 | 第18-19页 |
1.2.1.3 含N杂环类配体的配位聚合物 | 第19页 |
1.2.2 配位聚合物的合成 | 第19-23页 |
1.2.2.1 电化学法 | 第20-21页 |
1.2.2.2 共沉淀法 | 第21-22页 |
1.2.2.3 水热/溶剂热法 | 第22页 |
1.2.2.4 微波合成法 | 第22-23页 |
1.2.2.5 超声化学法 | 第23页 |
1.2.3 功能化配位聚合物的设计 | 第23-27页 |
1.2.3.1 配体作为功能性活性位点 | 第24-25页 |
1.2.3.2 金属离子/簇中心作为功能性活性位点 | 第25-26页 |
1.2.3.3 孔道内的客体分子作为功能性活性位点 | 第26-27页 |
1.3 配位聚合物基纳米材料的生物传感 | 第27-34页 |
1.3.1 配位聚合物基纳米材料的电化学生物传感 | 第28-30页 |
1.3.2 配位聚合物基纳米材料的电致化学发光生物传感 | 第30-32页 |
1.3.3 配位聚合物基纳米材料的光电化学生物传感 | 第32-34页 |
1.4 本课题提出的意义、研究内容和创新点 | 第34-37页 |
1.4.1 课题提出的意义 | 第34-35页 |
1.4.2 论文的研究内容和创新点 | 第35-37页 |
2 碳纳米管基负载邻苯二酚紫原位合成铜纳米颗粒电极制备及其过氧化氢检测应用 | 第37-51页 |
2.1 前言 | 第37-38页 |
2.2 实验部分 | 第38-39页 |
2.2.1 材料和试剂 | 第38页 |
2.2.2 测试仪器 | 第38-39页 |
2.2.3 修饰电极的制备 | 第39页 |
2.3 结果与讨论 | 第39-50页 |
2.3.1 PCV-Cu~(2+)螯合电极的电化学行为 | 第39-41页 |
2.3.2 形貌表征 | 第41页 |
2.3.3 X射线光电子能谱表征 | 第41-45页 |
2.3.4 电催化还原H_2O_2 | 第45-47页 |
2.3.5 电化学检测H_2O_2 | 第47-50页 |
2.3.6 实际样品分析 | 第50页 |
2.4 本章小结 | 第50-51页 |
3 原位电化学合成铜(Ⅱ)类普鲁士蓝膜修饰电极的制备及其传感研究 | 第51-63页 |
3.1 前言 | 第51页 |
3.2 实验部分 | 第51-53页 |
3.2.1 材料和试剂 | 第51-52页 |
3.2.2 测试仪器 | 第52页 |
3.2.3 修饰电极的制备 | 第52-53页 |
3.2.4 测试用实际样品预处理 | 第53页 |
3.3 结果与讨论 | 第53-62页 |
3.3.1 ITO/CuHCF修饰电极性质表征 | 第53-54页 |
3.3.2 ITO/CuHCF的直接电化学行为 | 第54-56页 |
3.3.3 电催化氧化卡托普利 | 第56-57页 |
3.3.4 卡托普利电化学生物传感 | 第57-60页 |
3.3.5 重现性、稳定性、干扰性测试和实际样品检测 | 第60-62页 |
3.4 本章小结 | 第62-63页 |
4 磁性锆铁类普鲁士蓝纳米材料的制备及其电化学DNA检测应用 | 第63-77页 |
4.1 前言 | 第63-64页 |
4.2 实验部分 | 第64-66页 |
4.2.1 材料和试剂 | 第64页 |
4.2.2 测试仪器 | 第64-65页 |
4.2.3 ZrHCF的制备 | 第65页 |
4.2.4 ZrHCF@MNPs的制备 | 第65页 |
4.2.5 rDNA-Grafted ZrHCF@MNPs自的制备 | 第65页 |
4.2.6 DNA传感器的制备和检测步骤 | 第65-66页 |
4.3 结果与讨论 | 第66-76页 |
4.3.1 MBs,ZrHCF,ZrHCF@MNPs和rDNA-grafted ZrHCF@MNPs的形貌和光谱表征 | 第66-69页 |
4.3.2 MBs,ZrHCF,ZrHCF@MNPs和rDNA-grafted ZrHCF@MNPs的电化学交流阻抗谱图表征 | 第69-70页 |
4.3.3 DNA电化学生物传感器的表征 | 第70页 |
4.3.4 DNA检测的机理研究 | 第70-72页 |
4.3.5 检测条件优化 | 第72-74页 |
4.3.6 DNA电化学生物传感器的分析性能 | 第74-76页 |
4.3.7 实际样品检测 | 第76页 |
4.4 本章小结 | 第76-77页 |
5 锆基金属卟琳框架材料“三位一体”传感界面的构筑及其电致化学发光蛋白激酶活性检测 | 第77-93页 |
5.1 前言 | 第77-79页 |
5.2 实验部分 | 第79-81页 |
5.2.1 材料和试剂 | 第79-80页 |
5.2.2 测试仪器 | 第80页 |
5.2.3 MOF-525和MOF-525-Zn的制备 | 第80-81页 |
5.2.4 PKA生物传感器的制备 | 第81页 |
5.3 结果与讨论 | 第81-92页 |
5.3.1 MOF-525和MOF-525-Zn的形貌、吸附测试和光谱表征 | 第81-84页 |
5.3.2 电化学和电致化学发光行为 | 第84-88页 |
5.3.3 PKA生物传感器表征 | 第88页 |
5.3.4 PKA生物传感器检测条件优化 | 第88-89页 |
5.3.5 PKA活性检测 | 第89-91页 |
5.3.6 实际样品检测 | 第91页 |
5.3.7 酶活抑制剂实验 | 第91-92页 |
5.4 本章小结 | 第92-93页 |
6 锆基卟啉金属有机框架物增强型光电流响应及其免标记磷酸蛋白质检测应用 | 第93-104页 |
6.1 前言 | 第93-95页 |
6.2 实验部分 | 第95-96页 |
6.2.1 材料和试剂 | 第95页 |
6.2.2 测试仪器 | 第95页 |
6.2.3 PCN-222的制备 | 第95-96页 |
6.2.4 PEC免标记磷酸蛋白质传感器的构建 | 第96页 |
6.3 结果与讨论 | 第96-103页 |
6.3.1 PCN-222的形貌、吸附测试和光谱表征 | 第96-97页 |
6.3.2 PCN-222的光电化学和电化学性质 | 第97-101页 |
6.3.3 PCN-222与磷酸化蛋白质的相互作用 | 第101-102页 |
6.3.4 磷酸化蛋白质免标记检测 | 第102-103页 |
6.4 本章小结 | 第103-104页 |
7 总结与展望 | 第104-106页 |
致谢 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-135页 |
附录 | 第135-136页 |