摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
1 引言 | 第13-21页 |
1.1 BR对植物生长发育的调控作用及机理研究 | 第13-15页 |
1.1.1 BR促进细胞伸长,分裂及维管束分化 | 第13页 |
1.1.2 BR调节光形态建成 | 第13-14页 |
1.1.3 BR可以提高植物对逆境的抵抗能力 | 第14-15页 |
1.2 BR信号转导的研究进展 | 第15页 |
1.3 BR在农业生产的应用 | 第15-16页 |
1.4 Ca~(2+)对植物生长发育的调控及机理研究 | 第16-18页 |
1.4.1 CaM与钙依赖蛋白 | 第16页 |
1.4.2 Ca~(2+)参与调控植物的抗病抗逆性 | 第16-17页 |
1.4.3 细胞Ca~(2+)稳态的调控 | 第17-18页 |
1.5 Ca~(2+)信号转导研究进展 | 第18-19页 |
1.6 BR与Ca~(2+)信号转导网络的关系 | 第19-20页 |
1.7 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
2 材料和方法 | 第21-33页 |
2.1 试验材料 | 第21-24页 |
2.1.1 供试植物和菌株 | 第21页 |
2.1.2 试剂 | 第21-22页 |
2.1.3 供试培养基及营养液 | 第22-23页 |
2.1.4 溶液配制 | 第23页 |
2.1.5 主要仪器和设备 | 第23-24页 |
2.1.6 引物设计软件 | 第24页 |
2.2 试验方法 | 第24-33页 |
2.2.1 拟南芥的培养方法 | 第24页 |
2.2.2 玉米的培养方法 | 第24页 |
2.2.3 植物叶片水势测定 | 第24页 |
2.2.4 细胞膜透性测定 | 第24-25页 |
2.2.5 叶绿素含量测定方法 | 第25页 |
2.2.6 层出镰孢接菌方法 | 第25页 |
2.2.7 灰葡萄孢BC22的接菌方法 | 第25-26页 |
2.2.8 Pst DC3000接菌方法 | 第26页 |
2.2.9 细胞间隙液提取及Ca~(2+)含量测定 | 第26页 |
2.2.10 MDH活性测定 | 第26页 |
2.2.11 Ca~(2+)细胞化学定位方法 | 第26-27页 |
2.2.12 Ca~(2+)真实性的检验方法 | 第27页 |
2.2.13 拟南芥总RNA的提取及cDNA第一条链的合成 | 第27-28页 |
2.2.14 拟南芥中Ca~(2+)-ATPase相关基因和Ca~(2+)通道相关基因的Real-time PCR检测 | 第28页 |
2.2.15 拟南芥细胞CaM相关基因的RT-PCR检测 | 第28页 |
2.2.16 CAM7过表达载体的构建 | 第28-31页 |
2.2.17 CAM7过表达突变体BR调控和合成相关基因的RT-PCR检测 | 第31-33页 |
3 结果与分析 | 第33-52页 |
3.1 BR对拟南芥和玉米抵抗逆境能力的影响 | 第33-39页 |
3.1.1 BR对拟南芥抵抗逆境能力的影响 | 第33-36页 |
3.1.2 BR对玉米逆境抵抗能力的影响 | 第36-39页 |
3.2 BR对玉米和拟南芥细胞Ca~(2+)分布的影响 | 第39-47页 |
3.2.1 BR对玉米细胞Ca~(2+)分布的影响 | 第39-41页 |
3.2.2 BR对拟南芥叶片细胞ca~(2+)分布的影响 | 第41-46页 |
3.2.3 植物组织细胞Ca~(2+)真实性验证 | 第46-47页 |
3.3 BR影响Ca~(2+)分布机理分析 | 第47-49页 |
3.3.1 BR对Ca~(2+)通道相关基因表达量的影响 | 第47-48页 |
3.3.2 BR对Ca~(2+)-ATPase相关基因表达量的影响 | 第48-49页 |
3.4 BR对CaM相关基因表达量的影响 | 第49-50页 |
3.5 过表达CAM7转基因拟南芥的表型分析 | 第50-51页 |
3.6 过表达CAM7对BR信号转导相关基因的表达量的影响 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
4.1 Ca~(2+)-ATPase和Ca~(2+)通道在BR调控植物生长发育过程中的作用 | 第52页 |
4.2 BR降低细胞壁Ca~(2+)水平与细胞伸长的关系 | 第52-53页 |
4.3 BR与Ca~(2+)/CaM信号转导的关系分析 | 第53-54页 |
5 结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
作者简历 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
发表的论文 | 第65-70页 |