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受水杨酸诱导的甜橙GSTU19基因启动子的分离和功能验证

摘要第7-9页
ABSTRACT第9-10页
缩略语表第11-12页
1 前言第12-21页
    1.1 启动子概述第12-16页
        1.1.1 植物启动子的基本结构第12-14页
        1.1.2 植物中受水杨酸调控的启动子的研究第14-16页
    1.2 谷胱甘肽S转移酶简述第16-17页
        1.2.1 GST的结构第16页
        1.2.2 GST的功能第16-17页
    1.3 遗传转化第17-20页
        1.3.1 农杆菌介导的稳定遗传转化第17页
        1.3.2 瞬时转化方法第17-20页
            1.3.2.1 农杆菌渗透法第18-19页
            1.3.2.2 原生质体转化第19-20页
    1.4 课题研究意义第20-21页
2 材料与方法第21-38页
    2.1 实验材料第21-24页
        2.1.1 植物材料第21页
        2.1.2 菌种和质粒第21-23页
        2.1.3 试剂和仪器第23-24页
        2.1.4 植物细胞培养基第24页
        2.1.5 细菌培养基第24页
    2.2 实验方法第24-38页
        2.2.1 植物材料准备第24-25页
        2.2.2 荧光定量PCR第25-26页
            2.2.2.1 RNA提取第25页
            2.2.2.2 RT-PCR第25-26页
        2.2.3 CiGSTU19基因启动子克隆第26-30页
            2.2.3.1 染色体步移文库构建第26-27页
            2.2.3.2 CiGSTU19启动子PCR扩增第27-28页
            2.2.3.3 扩增产物回收第28-29页
            2.2.3.4 TA克隆第29页
            2.2.3.5 E.coli DH5α感受态细胞的转化第29-30页
        2.2.4 CiGSTU19基因启动子缺失载体构建第30-33页
            2.2.4.1 设计引物第30页
            2.2.4.2 PCR扩增第30-31页
            2.2.4.3 扩增产物回收第31页
            2.2.4.4 TA克隆第31页
            2.2.4.5 质粒提取第31-32页
            2.2.4.6 重组载体构建第32页
            2.2.4.7 重组质粒转化农杆菌感受态细胞及筛选鉴定第32-33页
        2.2.5 拟南芥转化第33-34页
            2.2.5.1 拟南芥种植第33页
            2.2.5.2 拟南芥转化第33页
            2.2.5.3 转基因拟南芥抗性筛选及移栽第33-34页
        2.2.6 原生质体转化第34-35页
            2.2.6.1 分离原生质体第34页
            2.2.6.2 DNA-PEG-钙转化第34页
            2.2.6.3 原生质体培养第34-35页
            2.2.6.4 报告基因检测第35页
        2.2.7 GUS活性测定第35-38页
            2.2.7.1 植物组织的GUS染色第35页
            2.2.7.2 GUS活性的荧光定量测定第35-38页
3 结果与分析第38-58页
    3.1 诱导剂的确定第38-39页
        3.1.1 诱导剂的种类筛选第38页
        3.1.2 诱导剂水杨酸浓度的确定第38-39页
    3.2 水杨酸诱导的候选基因的选择第39-42页
        3.2.1 RNA提取及检测第39-40页
        3.2.2 候选基因的诱导表达情况分析第40-41页
        3.2.3 CiGSTU19诱导表达分析第41-42页
    3.3 CIGSTU19启动子的克隆和生物信息学元件分析第42-46页
        3.3.1 DNA提取及检测第42页
        3.3.2 染色体步移文库构建第42-44页
        3.3.3 CiGSTU19启动子元件分析第44-46页
    3.4 CIGSTU19基因的特征第46-47页
    3.5 CIGSTU19的转录调控模式第47-58页
        3.5.1 构建启动子缺失片段载体第47-54页
            3.5.1.1 PCAMBIA1391Z系列载体构建第47-50页
            3.5.1.2 pCAMBIA1301和pCAMBIA1302系列载体构建第50-54页
        3.5.2 遗传转化分析第54-55页
        3.5.3 原生质体瞬时表达分析第55-58页
4 讨论第58-61页
    4.1 水杨酸处理的时间、剂量第58页
    4.2 启动子表达分析第58-59页
    4.3 瞬时转化表达分析第59-60页
    4.4 人工合成启动子第60-61页
参考文献第61-69页
附录第69-72页
致谢第72页

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