| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词英汉注释表 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 铁皮石斛的研究概况 | 第14-18页 |
| 1.1.1 铁皮石斛的生长习性 | 第14-15页 |
| 1.1.2 铁皮石斛的化学成分研究 | 第15-16页 |
| 1.1.3 铁皮石斛的药理活性研究 | 第16-18页 |
| 1.2 多糖研究概况 | 第18-23页 |
| 1.2.1 多糖的提取 | 第18页 |
| 1.2.2 多糖的分离与纯化 | 第18-19页 |
| 1.2.3 多糖的结构表征 | 第19-21页 |
| 1.2.4 多糖的生物活性 | 第21-23页 |
| 1.3 本课题的立题背景及意义 | 第23-24页 |
| 1.4 本论文研究的主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 霍山铁皮石斛多糖提取工艺研究 | 第25-34页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 材料 | 第25页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 霍山铁皮石斛多糖的提取 | 第26页 |
| 2.2.2 蛋白质含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.3 多糖含量的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.4 霍山铁皮石斛多糖脱蛋白方法 | 第28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-33页 |
| 2.3.1 Sevag法脱蛋白 | 第28-29页 |
| 2.3.2 胰蛋白酶（TPS）法脱蛋白 | 第29-32页 |
| 2.3.3 胰蛋白酶-Sevag法脱蛋白 | 第32-33页 |
| 2.3.4 三种脱蛋白方法的比较 | 第33页 |
| 2.4 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 霍山铁皮石斛多糖分离纯化及组成分析 | 第34-45页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.1 材料 | 第34页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 霍山铁皮石斛多糖的脱色 | 第35页 |
| 3.2.2 霍山铁皮石斛多糖的DEAE纤维素柱层析 | 第35页 |
| 3.2.3 霍山铁皮石斛多糖的 Sephadex G-100柱层析 | 第35-36页 |
| 3.2.4 纯度鉴定 | 第36页 |
| 3.2.5 单糖组成分析 | 第36-37页 |
| 3.2.6 DOPA-1 的糖含量测定 | 第37页 |
| 3.2.7 DOPA-1 的糖醛酸含量测定 | 第37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-43页 |
| 3.3.1 霍山铁皮石斛多糖的脱色效果 | 第37-38页 |
| 3.3.2 霍山铁皮石斛多糖的纯化结果 | 第38-39页 |
| 3.3.3 纯度鉴定 | 第39-40页 |
| 3.3.4 单糖组成分析 | 第40-41页 |
| 3.3.5 DOPA-1 的糖含量测定结果 | 第41-43页 |
| 3.3.6 DOPA-1 糖醛酸含量测定结果 | 第43页 |
| 3.4 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 霍山铁皮石斛多糖DOPA-1 理化性质及结构特征分析 | 第45-54页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第45页 |
| 4.1.1 材料 | 第45页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.2.1 DOPA-1 的基本理化性质 | 第45-46页 |
| 4.2.2 DOPA-1 的分子量测定 | 第46-47页 |
| 4.2.3 DOPA-1 的高碘酸氧化和Smith降解 | 第47页 |
| 4.2.4 DOPA-1 的红外光谱分析 | 第47页 |
| 4.2.5 DOPA-1 的核磁共振分析 | 第47页 |
| 4.2.6 DOPA-1 的刚果红试验 | 第47-48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-53页 |
| 4.3.1 霍山铁皮石斛多糖DOPA-1 的基本理化性质结果 | 第48页 |
| 4.3.2 DOPA-1 的分子量测定结果 | 第48页 |
| 4.3.3 DOPA-1 的高碘酸氧化-Smith 降解结果 | 第48-50页 |
| 4.3.4 DOPA-1 的红外测定结果 | 第50-51页 |
| 4.3.5 DOPA-1 的核磁共振分析结果 | 第51-52页 |
| 4.3.6 DOPA-1 的刚果红试验分析结果 | 第52-53页 |
| 4.3.7 DOPA-1 的结构推测 | 第53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 霍山铁皮石斛多糖DOPA-1 对HepG2细胞凋亡的影响 | 第54-66页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第54-56页 |
| 5.1.1 材料 | 第54-55页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第55页 |
| 5.1.3 主要试剂的配制 | 第55-56页 |
| 5.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 5.2.1 细胞复苏与培养 | 第56页 |
| 5.2.2 实验分组 | 第56页 |
| 5.2.3 MTT法检测细胞活性及IC50的测定 | 第56-57页 |
| 5.2.4 倒置显微镜观察DOPA-1 对HepG2细胞形态的影响 | 第57页 |
| 5.2.5 细胞划痕实验观察DOPA-1 对HepG2细胞迁移作用的影响 | 第57页 |
| 5.2.6 DCFH-DA探针法检测细胞内ROS水平 | 第57页 |
| 5.2.7 JC-1 染色法检测线粒体膜电位 | 第57-58页 |
| 5.2.8 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第58页 |
| 5.2.9 Western blot检测Bax、Bcl-2 表达 | 第58页 |
| 5.2.10 统计学方法 | 第58页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
| 5.3.1 DOPA-1 对HepG2细胞增殖的影响 | 第58-59页 |
| 5.3.2 DOPA-1 对HepG2细胞形态的影响 | 第59-60页 |
| 5.3.3 DOPA-1 对HepG2细胞迁移能力的影响 | 第60-61页 |
| 5.3.4 DOPA-1 对 HepG2 细胞活性氧(ROS)水平的影响 | 第61页 |
| 5.3.5 DOPA-1 对 HepG2 细胞线粒体膜电位的影响 | 第61-63页 |
| 5.3.6 流式细胞术检测 HepG2 细胞凋亡 | 第63-64页 |
| 5.3.7 Western blot 检测 Bax、Bcl-2蛋白的表达 | 第64-65页 |
| 5.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第66-68页 |
| 6.1 主要结论 | 第66-67页 |
| 6.2 存在问题和待研究工作 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文及申请专利 | 第77页 |
