| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 缩略词表 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 1 材料与方法 | 第17-33页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第17-18页 |
| 1.2 仪器 | 第18-19页 |
| 1.3 试剂的配制 | 第19-23页 |
| 1.4 实验方法 | 第23-33页 |
| 1.4.1 成年大鼠心肌微血管内皮细胞（CMEC）的分离及缺氧-复氧模型建立 | 第23-24页 |
| 1.4.2 细胞培养 | 第24-25页 |
| 1.4.3 免疫荧光 | 第25页 |
| 1.4.4 免疫细胞化学 | 第25-26页 |
| 1.4.5 细胞增殖实验（MTS） | 第26页 |
| 1.4.6 乳酸脱氢酶检测（LDH） | 第26页 |
| 1.4.7 蛋白质的提取检测及Western Blotting | 第26-29页 |
| 1.4.8 血管形成实验 | 第29页 |
| 1.4.9 Transwell | 第29页 |
| 1.4.10 划痕实验 | 第29-30页 |
| 1.4.11 RT-PCR检测 | 第30-31页 |
| 1.4.12 CMEC增殖曲线绘制 | 第31页 |
| 1.4.13 统计学分析 | 第31-33页 |
| 2 实验结果 | 第33-41页 |
| 2.1 成年大鼠心肌微血管内皮细胞（CMEC）的分离与鉴定 | 第33-35页 |
| 2.1.1 CMEC的分离培养 | 第33-34页 |
| 2.1.2 CMEC表面标志第Ⅷ因子相关抗原和CD31的鉴定 | 第34-35页 |
| 2.1.3 DR5蛋白表达鉴定 | 第35页 |
| 2.2 常氧条件下TRAIL促进心肌微血管内皮细胞（CMEC）的迁移 | 第35-36页 |
| 2.3 缺氧-复氧（H/R）条件下TRAIL促进CMEC的迁移和血管形成 | 第36-40页 |
| 2.3.1 CMEC缺氧-复氧（H/R）模型建立 | 第36-37页 |
| 2.3.2 H/R条件下TRAIL促进CMEC的迁移和黏附分子表达 | 第37-38页 |
| 2.3.3 H/R条件下TRAIL促进CMEC血管形成和生长因子表达 | 第38-40页 |
| 2.4 RT-PCR检测TRAIL抑制炎症因子、促进eNOS表达 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-45页 |
| 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 综述 | 第51-61页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 在读期间参加的学术活动及研究成果 | 第63-64页 |
