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猪流行性腹泻病毒单克隆抗体的制备

致谢第4-5页
符号表第5-11页
摘要第11-13页
文献综述第13-19页
    1. 猪流行性腹泻的流性特征第13-14页
        1.1 猪流行性腹泻临床流行病学第13页
        1.2 猪流行性腹泻分子流行病学第13-14页
    2. 猪流行性腹泻病毒生物学特性第14页
    3. 猪流行性腹泻病毒的基因组结构特点第14-15页
        3.1 S蛋白结构功能第14页
        3.2 M蛋白结构功能第14-15页
        3.3 N蛋白结构功能第15页
        3.4 E蛋白结构功能第15页
    4. 猪流行性腹泻诊断技术第15-16页
        4.1 酶联免疫吸附试验第15-16页
        4.2 RT-PCR法第16页
        4.3 Taq Man荧光定量PCR第16页
        4.4 胶体金免疫层析技术第16页
    5. 猪流行性腹泻的综合防控第16-17页
    6. 猪流行性腹泻疫苗的研究第17页
        6.1 灭活疫苗第17页
        6.2 弱毒疫苗第17页
        6.3 多价联合疫苗第17页
        6.4 转基因植物疫苗第17页
    7 单克隆抗体在鉴别诊断方面的研究和应用第17-19页
引言第19-20页
试验一 PEDV单克隆抗体抗原的增殖与纯化第20-27页
    1. 材料与方法第20-23页
        1.1 材料第20-21页
            1.1.1 实验动物与毒株第20页
            1.1.2 主要试剂第20页
            1.1.3 常用溶液及其配制第20-21页
            1.1.4 主要实验仪器设备第21页
        1.2 实验方法第21-23页
            1.2.1 猪流行性腹泻病毒的增殖与纯化第21-23页
                1.2.1.1 病毒的增殖第21-22页
                1.2.1.2 猪流行性腹泻病毒的TCID50测定第22页
                1.2.1.3 猪流行性腹泻病毒的PCR鉴定第22页
                1.2.1.4 猪流行性腹泻病毒的纯化第22-23页
    2. 结果与分析第23-25页
        2.1 猪流行性腹泻病毒的增殖与纯化第23-25页
            2.1.1 猪流行性腹泻的增殖第23页
            2.1.2 PEDV的TCID50测定第23-24页
            2.1.3 猪流行性腹泻病毒的PCR鉴定第24页
            2.1.4 猪流行性腹泻病毒的纯化第24-25页
    3 结论与讨论第25-27页
        3.1 猪流行性腹泻病毒的增殖与纯化第25-27页
试验二PEDV单克隆抗体杂交瘤细胞株建立第27-39页
    1 材料和方法第27-34页
        1.1 材料第27-30页
            1.1.1 细胞、实验动物、疫苗及血清第27页
            1.1.2 主要试剂第27页
            1.1.3 主要仪器第27-28页
            1.1.4 常用溶液及其配制第28-30页
                1.1.4.1 细胞培养试剂第28-29页
                1.1.4.2 ELISA用试剂第29-30页
        1.2 方法第30-34页
            1.2.1 小鼠免疫第30页
            1.2.2 检测PEDV抗体的间接ELISA方法建立第30-31页
                1.2.2.1 间接ELISA方法操作步骤第30-31页
                1.2.2.2 矩阵法确定进行抗原的包被浓度和抗体的稀释度第31页
                1.2.2.3 酶标二抗最佳工作浓度确定第31页
                1.2.2.4 抗原最佳包被条件的确定第31页
                1.2.2.5 封闭剂的选择第31页
            1.2.3 免疫小鼠血清效价的检测第31-32页
            1.2.4 杂交瘤细胞株的建立第32-34页
                1.2.4.1 饲养细胞的制备第32页
                1.2.4.2 SP2/0 细胞的准备第32页
                1.2.4.3 脾细胞的制备第32-33页
                1.2.4.4 细胞融合第33页
                1.2.4.5 阳性杂交瘤细胞的筛选第33-34页
                1.2.4.6 采用有限稀释法对阳性杂交瘤细胞进行克隆第34页
    2. 结果与分析第34-37页
        2.1 间接ELISA方法的建立第34-36页
            2.1.1 抗原抗体最佳稀释度的检测结果第34-35页
            2.1.2 酶标二抗最佳工作浓度的确定第35页
            2.1.3 抗原最佳包被条件的测定结果第35-36页
            2.1.4 用三种不同的封闭剂的检测结果第36页
        2.2 免疫小鼠血清效价的检测结果第36页
        2.3 杂交瘤细胞株的建立第36-37页
    3. 结果讨论第37-39页
试验三 PEDV单克隆抗体腹水的制备第39-47页
    1. 材料与方法第39-43页
        1.1 材料第39-40页
            1.1.1 主要试剂第39页
            1.1.2 主要仪器第39页
            1.1.3 细胞及实验动物第39-40页
            1.1.4 常用溶液及其配制第40页
                1.1.4.1 细胞培养试剂第40页
        1.2 方法第40-43页
            1.2.1 腹水单抗的制备第40页
            1.2.2 单抗的效价测定第40-41页
            1.2.3 单抗亚类的鉴定第41页
            1.2.4 单抗的纯化及浓度测定第41页
                1.2.4.1 腹水纯化方法第41页
            1.2.5 单抗的生物学鉴定第41-43页
                1.2.5.1 杂交瘤细胞染色体计数第41-42页
                1.2.5.2 单抗相对亲和力常数测定第42页
                1.2.5.3 杂交瘤细胞株稳定性测定第42-43页
            1.2.6 单克隆抗体的特异性鉴定第43页
    2 结果与分析第43-46页
        2.1 单抗的生物学鉴定第43-46页
            2.1.1 杂交瘤细胞的染色体数目第43页
            2.1.2 单抗相对亲和力常数第43页
            2.1.3 单抗效价测定第43-44页
            2.1.4 单抗亚类鉴定第44页
            2.1.5 单克隆抗体的特异性鉴定第44页
            2.1.6 杂交瘤细胞株稳定性测定第44-46页
    3 结论与讨论第46-47页
总结第47-48页
参考文献第48-52页
英文摘要第52-53页

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