| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-16页 |
| 参考文献 | 第12-16页 |
| 第一部分 雷公藤内酯醇、沙利度胺对多发性骨髓瘤RPMI8226、ARP-1增殖抑制、周期阻滞及诱导凋亡作用 | 第16-24页 |
| 实验研究 | 第16-24页 |
| 一、实验材料与方法 | 第16-20页 |
| (一) 实验材料 | 第16-17页 |
| 1. 实验标本 | 第16页 |
| 2. 主要实验试剂 | 第16页 |
| 3. 主要实验设备 | 第16-17页 |
| 4. 主要试剂配制 | 第17页 |
| (二) 实验方法 | 第17-20页 |
| 1. 细胞培养 | 第17页 |
| 2. 细胞计数 | 第17页 |
| 3. MTT比色法检测细胞增殖 | 第17页 |
| 4. 细胞形态观察 | 第17页 |
| 5. 流式细胞仪检测细胞周期及细胞凋亡 | 第17-18页 |
| 6. 统计分析方法 | 第18-20页 |
| 二、实验结果 | 第20-24页 |
| (一) TPL对细胞的增殖抑制作用 | 第20-22页 |
| 1. TPL对RPMI8226和ARP-1细胞增殖的影响 | 第20-21页 |
| 2. TPL对RPMI8226和ARP-1形态学的改变 | 第21-22页 |
| (二) 流式细胞仪检测细胞周期和凋亡 | 第22-24页 |
| 1. 细胞周期 | 第22页 |
| 2. 细胞凋亡 | 第22-24页 |
| 第二部分 雷公藤内酯醇、沙利度胺对多发性骨髓瘤骨髓间充质干细胞作用的对比研究 | 第24-42页 |
| 实验研究 | 第24-42页 |
| 一、实验材料与方法 | 第24-32页 |
| (一) 实验材料 | 第24-27页 |
| 1. 实验标本 | 第24页 |
| 2. 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 3. 主要实验设备 | 第25-26页 |
| 4. 主要试剂配制 | 第26-27页 |
| (二)实验方法 | 第27-32页 |
| 1. BMMSCs的分离培养与体外扩增 | 第27页 |
| 2. BMMSCs的形态观察及流式细胞术分离鉴定 | 第27页 |
| 3. CCK8法测细胞增殖 | 第27页 |
| 4. 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 5. RT-qPCR检测IL-6、IL-1β、SCF mRNA表达 | 第28页 |
| 6. Western Blot分析NF-κB/P65蛋白质水平表达 | 第28-30页 |
| 7. ELISA测定细胞培养上清液VEGF含量 | 第30页 |
| 8. 统计分析方法 | 第30-32页 |
| 二、实验结果 | 第32-42页 |
| (一) BMMSCs的分离鉴定培养 | 第32页 |
| (二) TPL对BMMSCs增殖的影响 | 第32-33页 |
| (三) Tha对BMMSCs增殖的影响 | 第33-34页 |
| (四) TPL、Tha诱导BMMSCs凋亡 | 第34-36页 |
| (五) RT-qPCR检测IL-6、IL-1β、SCF mRNA表达 | 第36-38页 |
| (六) Western Blot分析NF-κB/P65蛋白水平表达 | 第38-39页 |
| (七) ELISA测定细胞培养上清液VEGF含量 | 第39-42页 |
| 分析与讨论 | 第42-50页 |
| (一) TPL对RPMI8226、ARP-1及BMMSCs具有抑制增殖作用 | 第42-43页 |
| (二) TPL诱导细胞凋亡 | 第43-44页 |
| (三) TPL下调NF-κB/P65通路 | 第44-45页 |
| (四) TPL抑制细胞因子IL-6、IL-1β、SCF、VEGF的表达 | 第45-50页 |
| 结论 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 附图 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 文献综述 | 第58-65页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
