| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 1 前言 | 第8-15页 |
| 1.1 拟南芥GSK3概述 | 第8-10页 |
| 1.1.1 拟南芥GSK3的生物学功能 | 第8-9页 |
| 1.1.2 拟南芥GSK3与植物响应逆境的关系 | 第9-10页 |
| 1.2 植物响应逆境的研究概述 | 第10-13页 |
| 1.2.1 植物响应逆境 | 第10-11页 |
| 1.2.2 拟南芥对水势的响应以及对渗透胁迫的耐受 | 第11-13页 |
| 1.3 实验设计 | 第13-15页 |
| 1.3.1 实验目的及意义 | 第13页 |
| 1.3.2 研究思路 | 第13-15页 |
| 2 材料和方法 | 第15-24页 |
| 2.1 材料 | 第15-17页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第15页 |
| 2.1.2 菌株 | 第15-16页 |
| 2.1.3 载体 | 第16页 |
| 2.1.4 试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.5 实验中的主要仪器设备 | 第17页 |
| 2.2 方法 | 第17-24页 |
| 2.2.1 拟南芥在土中培养 | 第17页 |
| 2.2.2 拟南芥在培养皿中培养 | 第17页 |
| 2.2.3 载体的构建 | 第17-18页 |
| 2.2.4 热激法转化大肠杆菌感受态细胞 | 第18页 |
| 2.2.5 农杆菌电击转化 | 第18页 |
| 2.2.6 农杆菌介导的拟南芥遗传转化 | 第18-19页 |
| 2.2.7 拟南芥总RNA提取方法 | 第19页 |
| 2.2.8 拟南芥总蛋白提取方法 | 第19页 |
| 2.2.9 Western Blot | 第19-20页 |
| 2.2.10 拟南芥中用TRIzon总RNA提取方法 | 第20-21页 |
| 2.2.11 相差显微镜观察拟南芥根尖 | 第21页 |
| 2.2.12 GUS染色 | 第21页 |
| 2.2.13 激光共聚焦显微镜观察蛋白的组织以及细胞定位 | 第21页 |
| 2.2.14 荧光实时定量PCR（qRT-PCR）检测基因表达 | 第21-22页 |
| 2.2.15 PEG8000模拟渗透胁迫环境的不同水势条件下拟南芥根长的测量实验 | 第22-23页 |
| 2.2.16 RNA-seq中的二代测序转录组测序结果分析 | 第23-24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-43页 |
| 3.1 拟南芥GSK3的组织表达分析 | 第24-25页 |
| 3.2 AtSK11，AtSK12和AtSK13的亚细胞定位 | 第25-29页 |
| 3.3 AtSK11，AtSK12和AtSK13突变体在不同水势条件下的敏感性不同 | 第29-34页 |
| 3.4 AtSK11和AtSK12自身在转录水平和蛋白水平与不同水势的关系 | 第34-36页 |
| 3.5 AtSK11和AtSK12可能不参与地上部分对水势响应的过程 | 第36-37页 |
| 3.6 atsk11atsk12和Col-0 在不同水势下的转录组分析 | 第37-43页 |
| 3.6.1 AtSK11和AtSK12共同参与拟南芥响应渗透胁迫过程 | 第38-39页 |
| 3.6.2 atsk11atsk12在-0.4MPa和-0.6MPa时相较于野生型敏感性不同 | 第39-41页 |
| 3.6.3 atsk11atsk12中特异在-0.4MPa时发挥作用影响根发育的基因 | 第41-43页 |
| 4 讨论和展望 | 第43-44页 |
| 4.1 讨论 | 第43页 |
| 4.2 展望 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
