脱细胞脊髓支架制备及其生物相容性的实验研究
中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-17页 |
研究现状、成果 | 第12-16页 |
研究目的、方法 | 第16-17页 |
一、Wistar大鼠脱细胞脊髓支架制备 | 第17-27页 |
1.1 对象和方法 | 第17-23页 |
1.1.1 动物来源 | 第17-18页 |
1.1.2 主要试剂 | 第18-19页 |
1.1.3 主要仪器 | 第19-20页 |
1.1.4 实验方法 | 第20-23页 |
1.2 结果 | 第23-24页 |
1.2.1 形态学观察 | 第23页 |
1.2.2 组织学观察 | 第23-24页 |
1.2.3 组织DNA检测 | 第24页 |
1.3 讨论 | 第24-26页 |
1.3.1 组织工程学在神经修复中的意义 | 第24页 |
1.3.2 脊髓支架作为干细胞移植的载体 | 第24-25页 |
1.3.3 脱细胞脊髓支架的优势 | 第25-26页 |
1.4 小结 | 第26-27页 |
二、Wistar大鼠脊髓神经元细胞分离培养 | 第27-37页 |
2.1 对象和方法 | 第27-31页 |
2.1.1 动物来源 | 第27页 |
2.1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
2.1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
2.1.4 试验方法 | 第29-31页 |
2.2 结果 | 第31-32页 |
2.2.1 细胞形态学观察 | 第31页 |
2.2.2 大鼠脊髓神经元细胞免疫组化鉴定 | 第31页 |
2.2.3 细胞计数结果 | 第31-32页 |
2.2.4 大鼠脊髓神经元细胞生长状态 | 第32页 |
2.3 讨论 | 第32-35页 |
2.3.1 脊髓微观结构特点 | 第32页 |
2.3.2 血脊髓屏障的作用及特性 | 第32-34页 |
2.3.3 运动神经元在脊髓中的作用 | 第34-35页 |
2.4 小结 | 第35-37页 |
三、大鼠脊髓神经元细胞与脱细胞脊髓支架共培养 | 第37-49页 |
3.1 对象和方法 | 第37-42页 |
3.1.1 主要试剂 | 第37-38页 |
3.1.2 主要仪器 | 第38-39页 |
3.1.3 试验方法 | 第39-42页 |
3.2 实验结果 | 第42-43页 |
3.2.1 HE染色 | 第42页 |
3.2.2 免疫组化 | 第42-43页 |
3.2.3 扫描电镜观察 | 第43页 |
3.2.4 髓鞘染色 | 第43页 |
3.2.5 MTT细胞毒性分析 | 第43页 |
3.3 讨论 | 第43-49页 |
3.3.1 组织再生的策略 | 第45-46页 |
3.3.2 生物支架在脊髓损伤治疗中的应用意义 | 第46-49页 |
论文创新点 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-65页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第65-67页 |
附录 | 第67-76页 |
综述 组织工程学治疗脊髓损伤的研究进展 | 第76-96页 |
综述参考文献 | 第85-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
个人简介 | 第97页 |