| 英文缩略语词表 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 前言 | 第17-21页 |
| 第一部分 兔脂肪来源于细胞的分离、培养、鉴定和定向诱导分化 | 第21-31页 |
| 摘要 | 第21页 |
| 1. 实验材料与试剂 | 第21-23页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第22页 |
| 1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 1.3 实验组织来源 | 第23页 |
| 2. 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.1 兔脂肪来源干细胞的分离、培养 | 第23-24页 |
| 2.2 细胞形态学观察 | 第24页 |
| 2.3 兔脂肪来源干细胞相关标志物的鉴定 | 第24-25页 |
| 2.4 ADSCs诱导成脂、成骨的潜能 | 第25-26页 |
| 3. 结果 | 第26-29页 |
| 3.1 细胞形态学改变 | 第26-27页 |
| 3.2 干细胞相关标志物的鉴定 | 第27-28页 |
| 3.3 成脂诱导潜能 | 第28-29页 |
| 3.4 成骨诱导潜能 | 第29页 |
| 4. 讨论 | 第29-30页 |
| 5. 小结 | 第30-31页 |
| 第二部分 β-磷酸三钙支架的制备及特性鉴定 | 第31-40页 |
| 摘要 | 第31页 |
| 1. 实验材料与试剂 | 第31-33页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第31-33页 |
| 1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 2. 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.1 液相沉淀法制备纳米级β-TCP粉体 | 第33页 |
| 2.2 纳米级β-TCP粉体的XRD和FTIR检测 | 第33-34页 |
| 2.3 纳米级多孔β-TCP支架材料的制备 | 第34页 |
| 2.4 纳米级多孔β-TCP支架材料的表征测定 | 第34-35页 |
| 3. 结果 | 第35-37页 |
| 3.1 纳米级β-TCP粉体的XRD结果 | 第35页 |
| 3.2 纳米级β-TCP粉体的FTIR结果 | 第35-36页 |
| 3.3 纳米级多孔β-TCP支架材料的光学显微镜和扫描电子显微镜观察 | 第36-37页 |
| 3.4 纳米级β-TCP支架材料的孔隙率、吸水率和抗压强度测定 | 第37页 |
| 4. 讨论 | 第37-39页 |
| 5. 小结 | 第39-40页 |
| 第三部分 生物素-亲和素系统促进脂肪来源干细胞在β-磷酸三钙支架上粘附的研究 | 第40-52页 |
| 摘要 | 第40-41页 |
| 1. 实验材料与试剂 | 第41-42页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第41页 |
| 1.2 主要试剂 | 第41-42页 |
| 1.3 实验组织来源 | 第42页 |
| 2. 实验方法 | 第42-45页 |
| 2.1 兔脂肪来源干细胞的分离、培养 | 第42页 |
| 2.2 CCK-8法测定纳米级多孔β-TCP支架材料的细胞毒性 | 第42-43页 |
| 2.3 ADSCs的生物素化处理和鉴定 | 第43-44页 |
| 2.4 β-TCP支架材料的亲和素化处理 | 第44页 |
| 2.5 细胞粘附试验 | 第44页 |
| 2.6 β-TCP支架及亲和素化β-TCP支架细胞相容性的观察 | 第44-45页 |
| 2.7 统计学分析 | 第45页 |
| 3. 结果 | 第45-48页 |
| 3.1 CCK-8法测定纳米级多孔β-TCP支架材料的细胞毒性试验 | 第45-46页 |
| 3.2 ADSCs的生物素化鉴定 | 第46-47页 |
| 3.3 ADSCs与β-TCP以及ABBS修饰后ADSCs与β-TCP在不同时间点的粘附率. | 第47页 |
| 3.4 ADSCs与β-TCP以及ABBS修饰后ADSCs与β-TCP的生物相容性 | 第47-48页 |
| 4. 讨论 | 第48-50页 |
| 5. 小结 | 第50-52页 |
| 第四部分 富血小板血浆促进脂肪来源干细胞与β-磷酸三钙支架裸鼠体内异位成骨的研究 | 第52-65页 |
| 摘要 | 第52页 |
| 1. 实验材料与试剂 | 第52-54页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第52-53页 |
| 1.2 主要试剂 | 第53-54页 |
| 1.3 实验组织来源 | 第54页 |
| 2. 实验方法 | 第54-59页 |
| 2.1 兔脂肪来源干细胞的分离、培养 | 第54页 |
| 2.2 富血小板血浆的制备方法 | 第54-55页 |
| 2.3 实验动物分组 | 第55-56页 |
| 2.4 ADSCs与富血小板血浆、β-TCP支架构建细胞-支架材料复合物 | 第56页 |
| 2.5 动物实验及术后护理 | 第56-57页 |
| 2.6 术后大体情况观察 | 第57页 |
| 2.7 异位组织工程骨的组织学检查 | 第57-59页 |
| 2.8 骨钙素(OCN)定量分析 | 第59页 |
| 3. 结果 | 第59-62页 |
| 3.1 异位组织工程骨的HE染色 | 第59-60页 |
| 3.2 异位组织工程骨的骨钙素(OCN)染色 | 第60-61页 |
| 3.3 骨钙素(OCN)定量分析 | 第61-62页 |
| 4. 讨论 | 第62-64页 |
| 5. 小结 | 第64-65页 |
| 第五部分 富血小板血浆促进脂肪来源干细胞与β-磷酸三钙支架复合物修复兔下领骨缺损的研究 | 第65-79页 |
| 摘要 | 第65页 |
| 1. 实验材料与试剂 | 第65-67页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第65-66页 |
| 1.2 主要试剂 | 第66-67页 |
| 1.3 实验组织来源 | 第67页 |
| 2. 实验方法 | 第67-72页 |
| 2.1 兔脂肪来源干细胞的分离、培养 | 第67页 |
| 2.2 实验动物分组 | 第67页 |
| 2.3 ADSCs与富血小板血浆、β-TCP构建细胞-支架材料复合物 | 第67-68页 |
| 2.4 动物实验及术后护理 | 第68-69页 |
| 2.5 术后大体情况观察 | 第69页 |
| 2.6 实验动物下颌骨修复情况的评估 | 第69页 |
| 2.7 组织工程骨的组织学检查 | 第69-70页 |
| 2.8 骨钙素(OCN)定量分析 | 第70页 |
| 2.9 荧光定量RT-PCR测骨钙素(OCN),碱性磷酸酶(ALP)的表达量 | 第70-72页 |
| 3. 结果 | 第72-76页 |
| 3.1 兔下颌骨修复情况的评估 | 第72-73页 |
| 3.2 兔下颌组织工程骨的HE染色 | 第73-74页 |
| 3.3 兔下颌组织工程骨的骨钙素(OCN)染色 | 第74页 |
| 3.4 骨钙素(OCN)定量分析 | 第74-75页 |
| 3.5 荧光定量RT-PCR测骨钙素(OCN),碱性磷酸酶(ALP)的表达量 | 第75-76页 |
| 4. 讨论 | 第76-78页 |
| 5. 小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-86页 |
| 全文总结 | 第86-87页 |
| 综述 | 第87-94页 |
| 参考文献 | 第90-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 研究生阶段发表的文章 | 第95-96页 |
