| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略用语及中英文对照表 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1.1 种群结构 | 第15页 |
| 1.2 鱼类卵巢的组织学分期 | 第15-16页 |
| 1.3 自然条件下的鱼类性别逆转 | 第16-17页 |
| 1.4 基因与鱼类性别 | 第17页 |
| 1.5 人为手段改变鱼类的性别 | 第17-18页 |
| 1.6 采取人为手段的意义 | 第18-19页 |
| 1.7 芳香化酶基因介绍 | 第19-21页 |
| 1.8 芳香化酶基因的特点 | 第21-22页 |
| 1.9 芳香化酶在鱼卵巢发育中的表达状况研究 | 第22-23页 |
| 1.10 芳香化酶在水产中的应用概述 | 第23页 |
| 1.11 研究目标和拟解决的关键问题 | 第23-25页 |
| 第二章 材料方法与实验设计 | 第25-36页 |
| 2.1 仪器和设备 | 第25-26页 |
| 2.2 试剂与试剂盒 | 第26页 |
| 2.3 主要试剂和酶 | 第26-28页 |
| 2.4 实验材料 | 第28页 |
| 2-4-1 载体、菌株和细胞 | 第28页 |
| 2-4-2 实验用鱼 | 第28页 |
| 2.5 实验方法 | 第28-36页 |
| 2-5-1 各种生物学组织总RNA的提取 | 第28-29页 |
| 2-5-2 提取基因组DNA (苯酚氯仿法) | 第29-30页 |
| 2-5-3 质粒DNA的提取 | 第30-31页 |
| 2-5-4 序列分析 | 第31页 |
| 2-5-5 RT-PCR | 第31-32页 |
| 2-5-6 感受态制作与质粒转化 | 第32-33页 |
| 2-5-7 目的基因在大肠杆菌中的表达 | 第33页 |
| 2-5-8 免疫荧光定位 | 第33-34页 |
| 2-5-9 提取RNA和合成SMART c DNA | 第34页 |
| 2-5-10 克隆鮸鱼cyp19a1a基因 | 第34-35页 |
| 2-5-11 克隆鮸鱼cyp19a1a启动子 | 第35-36页 |
| 第三章 实验结果及分析 | 第36-41页 |
| 3.1 氨基酸序列比较和系统发育分析 | 第36-37页 |
| 3.2 多克隆抗血清制备和Westerm印迹分析 | 第37页 |
| 3.3 鮸鱼免疫组织化学定位和定量cyp19a1a在卵巢中的表达 | 第37-39页 |
| 3.4 鮸鱼体内cyp19a1a启动子在斑马鱼中的表达分析 | 第39-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 芳香化酶基因具有保守性 | 第41-42页 |
| 4.2 鮸鱼芳香化酶基因表达具有组织细胞特异性 | 第42页 |
| 4.3 Mmcyp19a1a启动子的特异性 | 第42-43页 |
| 4.4 总结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第48页 |
