| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 第一部分 绪论 | 第17-26页 |
| 1 溃疡性结肠炎的流行病现状及发病原因 | 第17页 |
| 1.1 溃疡性结肠炎的流行病学现状 | 第17页 |
| 1.2 溃疡性结肠炎的发病原因 | 第17页 |
| 2 溃疡性结肠炎的发病机制 | 第17-21页 |
| 2.1 免疫因素 | 第17-20页 |
| 2.1.1 白细胞介素和肿瘤坏死因子-α 机制 | 第18页 |
| 2.1.2 T细胞机制 | 第18-19页 |
| 2.1.3 干扰素 γ 机制 | 第19页 |
| 2.1.4 脂联素机制 | 第19-20页 |
| 2.1.5 瘦素机制 | 第20页 |
| 2.2 感染因素 | 第20页 |
| 2.3 细胞凋亡因素 | 第20-21页 |
| 2.4 环境因素 | 第21页 |
| 2.5 遗传因素 | 第21页 |
| 2.6 其他因素 | 第21页 |
| 3 丹皮酚的药理作用 | 第21-23页 |
| 3.1 抗菌消炎作用 | 第22页 |
| 3.2 抗氧化作用 | 第22页 |
| 3.3 抗肿瘤作用 | 第22页 |
| 3.4 增强免疫力作用 | 第22-23页 |
| 3.5 保护心脑血管作用 | 第23页 |
| 3.6 其他作用 | 第23页 |
| 4 丹皮酚注射液的临床应用研究进展 | 第23-25页 |
| 4.1 增强免疫力 | 第23页 |
| 4.2 镇痛作用 | 第23-24页 |
| 4.3 解热作用 | 第24页 |
| 4.4 抗癌作用 | 第24页 |
| 4.5 促进骨骼愈合 | 第24-25页 |
| 4.6 其他作用 | 第25页 |
| 5 本研究的意义和创新点 | 第25-26页 |
| 第二部分 丹皮酚对溃疡性结肠炎的临床疗效观察 | 第26-43页 |
| 1 资料 | 第26-28页 |
| 1.1 病例来源 | 第26页 |
| 1.2 诊断标准 | 第26页 |
| 1.3 一般资料 | 第26-27页 |
| 1.4 纳入标准 | 第27-28页 |
| 1.5 排除标准 | 第28页 |
| 2 研究方法 | 第28-30页 |
| 2.1 治疗方法 | 第28-29页 |
| 2.1.1 对照组治疗方法 | 第28页 |
| 2.1.2 治疗组治疗方法 | 第28-29页 |
| 2.2 治疗检测 | 第29页 |
| 2.2.1 功效指标检测 | 第29页 |
| 2.2.2 安全指标检测 | 第29页 |
| 2.3 疗效评价标准 | 第29-30页 |
| 2.4 统计学处理 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-40页 |
| 3.1 两组患者治疗前后血小板浓度比较 | 第30-31页 |
| 3.2 两组患者治疗前后血红蛋白浓度比较 | 第31页 |
| 3.3 两组患者治疗前后白蛋白浓度比较 | 第31-32页 |
| 3.4 两组患者治疗前后C反应蛋白浓度比较 | 第32-33页 |
| 3.5 两组患者治疗前后红细胞沉降速率比较 | 第33-34页 |
| 3.6 两组患者治疗前后氧化应激水平比较 | 第34-35页 |
| 3.7 两组患者治疗前后炎性因子水平比较 | 第35-38页 |
| 3.8 两组患者治疗前后ICAM-1 蛋白表达水平变化情况 | 第38-39页 |
| 3.9 两组患者治疗前后MMP-9 蛋白表达水平变化情况 | 第39-40页 |
| 3.10 疗效评价及不良反应发生情况 | 第40页 |
| 4 讨论 | 第40-41页 |
| 5 本章小结 | 第41-43页 |
| 第三部分 丹皮酚对DSS诱导溃疡性结肠炎大鼠模型的 保护作用 | 第43-62页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 1.3 实验仪器 | 第43-44页 |
| 2 实验方法 | 第44-50页 |
| 2.1 模型制备方法 | 第44页 |
| 2.2 观察指标 | 第44-49页 |
| 2.2.1 大鼠一般状态及体重变化情况 | 第44-45页 |
| 2.2.2 血清炎性因子水平检测 | 第45页 |
| 2.2.3 组织炎性因子mRNA检测 | 第45-47页 |
| 2.2.4 体内氧化应激水平检测 | 第47-48页 |
| 2.2.5 组织损伤学评分 | 第48-49页 |
| 2.2.6 ICAM-1、MMP-9 蛋白表达水平检测 | 第49页 |
| 2.2.7 血管密度检测 | 第49页 |
| 2.2.8 血管微血栓检测 | 第49页 |
| 2.3 数据统计 | 第49-50页 |
| 3 结果 | 第50-60页 |
| 3.1 大鼠体重及DAI变化情况 | 第50-51页 |
| 3.1.1 各组大鼠体重变化情况 | 第50-51页 |
| 3.1.2 各组大鼠DAI指数变化情况 | 第51页 |
| 3.2 血清炎性因子水平 | 第51-53页 |
| 3.3 组织炎性因子mRNA表达情况 | 第53-54页 |
| 3.3.1 IL-10 mRNA表达情况 | 第54页 |
| 3.4 体内氧化应激水平变化情况 | 第54-55页 |
| 3.5 组织损伤学评分 | 第55-57页 |
| 3.6 ICAM-1、MMP-9 蛋白表达水平 | 第57页 |
| 3.7 平均血管密度及血管微血栓形成情况 | 第57-60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 5 本章小结 | 第61-62页 |
| 第四部分 丹皮酚对DSS诱导所致肠炎的抗炎机制研究 | 第62-73页 |
| 1 实验材料 | 第62-63页 |
| 1.1 实验动物 | 第62页 |
| 1.2 实验仪器 | 第62页 |
| 1.3 实验试剂 | 第62-63页 |
| 2 实验方法 | 第63-64页 |
| 2.1 肠炎模型制备、分组与处理 | 第63页 |
| 2.2 血清酶联免疫(Elisa)法测定大鼠血清炎性因子水平 | 第63-64页 |
| 2.3 Western Blot法测定蛋白表达水平 | 第64页 |
| 2.3.1 组织蛋白提取 | 第64页 |
| 2.3.2 电泳、转膜 | 第64页 |
| 2.4 数据分析 | 第64页 |
| 3 实验结果 | 第64-70页 |
| 3.1 各组大鼠血清炎症因子的表达 | 第64-67页 |
| 3.2 丹皮酚对DSS诱导的实验性肠炎中NF-κB通路的影响 | 第67-69页 |
| 3.3 丹皮酚对DSS诱导的实验性肠炎中MAPK通路的影响 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70-72页 |
| 4.1 炎症相关疾病的发生和发展与体内的细胞因子的产生紧密相关 | 第70-71页 |
| 4.2 丹皮酚可以通过阻断NF-κB和MAPK信号通路抑制炎症因子产生 | 第71-72页 |
| 5 本章小结 | 第72-73页 |
| 第五部分 丹皮酚对大鼠CD4+T细胞亚群及其相关细胞 因子表达的影响研究 | 第73-84页 |
| 1 材料和仪器 | 第73-74页 |
| 1.1 实验动物 | 第73页 |
| 1.2 实验试剂 | 第73-74页 |
| 1.3 实验器材 | 第74页 |
| 2 研究方法 | 第74-76页 |
| 2.1 动物分组和处理 | 第74页 |
| 2.2 指标检测 | 第74-76页 |
| 2.2.1 流式细胞术检测大鼠外周血单个核细胞CD4+T细胞分型Thl、Th2、Thl7和Treg细胞的表达 | 第74-75页 |
| 2.2.2 RT-PCR法检测CD4+T细胞各亚型转录因子的表达 | 第75页 |
| 2.2.3 抗体芯片检测CD4+T各细胞因子的表达 | 第75页 |
| 2.2.4 免疫组织化学检测Thl、Th2、Thl7和Treg在肠粘膜的表达 | 第75-76页 |
| 2.2.5 Western Blot检测结肠粘膜组织IL-23R、Jak2、p-stat3、p-smad表达 | 第76页 |
| 2.3 统计学方法 | 第76页 |
| 3 研究结果 | 第76-81页 |
| 3.1 丹皮酚对各组大鼠外周单核细胞CD4+T细胞分型的干预作用 | 第76-77页 |
| 3.2 RT-PCR法检测CD4+T细胞各亚型转录因子的表达 | 第77页 |
| 3.3 抗体芯片检测各细胞因子的表达 | 第77-79页 |
| 3.4 大鼠结肠粘膜组织Thl、Th2、Thl7和Treg细胞的表达 | 第79-80页 |
| 3.5 丹皮酚通过IL-23R/Jak2/Stat3通路治疗溃疡性结肠炎 | 第80-81页 |
| 4 讨论 | 第81-83页 |
| 4.1 丹皮酚通过影响CD4+T细胞分型发挥抗炎作用 | 第81页 |
| 4.2 丹皮酚通过IL-23R/Jak2/Stat3通路治疗结肠炎 | 第81-83页 |
| 5 本章小结 | 第83-84页 |
| 第六部分 丹皮酚对模型大鼠肠黏膜相关细胞因子的影响 | 第84-93页 |
| 1 实验材料 | 第84-85页 |
| 1.1 动物 | 第84页 |
| 1.2 试剂 | 第84页 |
| 1.3 实验器材 | 第84-85页 |
| 2 研究方法 | 第85-86页 |
| 2.1 造模、分组及给药 | 第85页 |
| 2.2 平均血管密度及血管微血栓形成 | 第85页 |
| 2.3 VEGF水平检测 | 第85页 |
| 2.4 NO水平检测 | 第85页 |
| 2.5 bFGF水平检测 | 第85-86页 |
| 2.6 HIF-1 水平检测 | 第86页 |
| 2.7 PDGF水平检测 | 第86页 |
| 2.8 统计学方法 | 第86页 |
| 3 研究结果 | 第86-91页 |
| 3.1 平均血管密度及微血栓形成情况 | 第86-87页 |
| 3.2 各组大鼠VEGF水平变化情况 | 第87页 |
| 3.3 各组大鼠NO水平变化情况 | 第87-88页 |
| 3.4 各组大鼠bFGF水平变化情况 | 第88-90页 |
| 3.5 各组大鼠HIF-1 水平变化情况 | 第90页 |
| 3.6 各组大鼠PDGF水平变化情况 | 第90-91页 |
| 4 讨论 | 第91-92页 |
| 5 本章小结 | 第92-93页 |
| 全文总结 | 第93-96页 |
| 主要结论 | 第93-94页 |
| 创新点 | 第94页 |
| 展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
