摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
第一章 文献综述 | 第17-36页 |
1.1 脂肪组织概述 | 第17-22页 |
1.1.1 脂肪组织的起源及种类 | 第17-19页 |
1.1.2 脂肪组织的发育及其调控 | 第19-20页 |
1.1.3 脂肪组织的功能 | 第20-22页 |
1.2 鱼类脂肪细胞研究进展 | 第22-28页 |
1.2.1 鱼类脂肪细胞培养体系 | 第23-25页 |
1.2.2 鱼类脂肪细胞发育的主要分子调控 | 第25-26页 |
1.2.3 影响鱼类脂肪细胞发育的因素 | 第26-28页 |
1.3 脂肪组织TG含量的调控 | 第28-32页 |
1.3.1 脂肪酸的从头合成 | 第28-29页 |
1.3.2 TG合成 | 第29-30页 |
1.3.3 脂质分解 | 第30-31页 |
1.3.4 脂肪细胞凋亡 | 第31-32页 |
1.4 PUFA对脂肪组织TG含量的调控 | 第32-36页 |
1.4.1 PUFA抑制脂肪酸从头合成 | 第32-33页 |
1.4.2 PUFA抑制TG合成 | 第33-34页 |
1.4.3 PUFA促进脂质分解 | 第34页 |
1.4.4 PUFA促进细胞凋亡 | 第34-36页 |
第二章 EPA影响草鱼腹腔脂肪组织脂质蓄积的在体与离体研究 | 第36-52页 |
2.1 引言 | 第36-37页 |
2.2 材料和方法 | 第37-43页 |
2.2.1 离体研究 | 第37-40页 |
2.2.2 在体研究 | 第40-43页 |
2.2.3 数据统计分析 | 第43页 |
2.3 结果 | 第43-49页 |
2.3.1 日粮中EPA对草鱼生长及生物学性状的影响 | 第43-44页 |
2.3.2 EPA诱导草鱼脂肪细胞的凋亡 | 第44-45页 |
2.3.3 ROS调节EPA诱导草鱼脂肪细胞凋亡 | 第45页 |
2.3.4 EPA促进脂肪细胞水解 | 第45-46页 |
2.3.5 EPA抑制脂肪酸的从头合成 | 第46-47页 |
2.3.6 EPA促进脂肪细胞分化 | 第47-48页 |
2.3.7 EPA的胞内吸收作用 | 第48-49页 |
2.4 讨论 | 第49-52页 |
第三章 EPA促进草鱼脂肪细胞表达甘油激酶基因 | 第52-64页 |
3.1 引言 | 第52-53页 |
3.2 材料和方法 | 第53-55页 |
3.2.1 主要试剂及配制 | 第53页 |
3.2.2 细胞培养 | 第53页 |
3.2.3 细胞活力检测 | 第53页 |
3.2.4 油红O染色 | 第53页 |
3.2.5 TG含量检测 | 第53-54页 |
3.2.6 PCR扩增 | 第54页 |
3.2.7 实时定量PCR(RT-PCR) | 第54页 |
3.2.8 GyK酶活性检测 | 第54页 |
3.2.9 蛋白免疫印迹 | 第54页 |
3.2.10 数据分析 | 第54-55页 |
3.3 结果 | 第55-61页 |
3.3.1 GyK基因组织表达谱 | 第55页 |
3.3.2 草鱼前体脂肪细胞发育过程中GyK的表达模式 | 第55-56页 |
3.3.3 OA诱导肥大型草鱼脂肪细胞 | 第56-57页 |
3.3.4 EPA诱导草鱼前体脂肪细胞表达GyK基因 | 第57-58页 |
3.3.5 EPA促进的脂解作用于GyK的诱导 | 第58-59页 |
3.3.6 PPARγ 调节EPA诱导的GyK基因的表达 | 第59-61页 |
3.4 讨论 | 第61-64页 |
第四章 日粮添加 α-亚麻酸对草鱼稚鱼脂质代谢,脂肪酸组成及腹腔脂肪细胞凋亡的影响 | 第64-77页 |
4.1 引言 | 第64页 |
4.2 材料和方法 | 第64-68页 |
4.2.1 主要试剂 | 第64-65页 |
4.2.2 试验动物和饲料制作 | 第65-66页 |
4.2.3 饲养及采样 | 第66-67页 |
4.2.4 常规成分分析 | 第67页 |
4.2.5 脂肪酸组成成分分析 | 第67页 |
4.2.6 酶活性检测 | 第67页 |
4.2.7 血清生化检测 | 第67页 |
4.2.8 RNA提取及RT-PCR | 第67-68页 |
4.2.9 超微结构观察 | 第68页 |
4.2.10 统计分析 | 第68页 |
4.3 结果 | 第68-74页 |
4.3.1 生长和生物学性状 | 第68-69页 |
4.3.2 肌肉及肝胰脏的蛋白和脂质含量 | 第69页 |
4.3.3 肌肉、肝胰脏和腹腔脂肪组织的脂肪酸组成 | 第69-72页 |
4.3.4 血清生化指标 | 第72页 |
4.3.5 基因表达 | 第72-73页 |
4.3.6 凋亡相关酶活的检测及线粒体超微结构观察 | 第73-74页 |
4.4 讨论 | 第74-77页 |
第五章 α-亚麻酸对草鱼脂肪细胞凋亡的影响及其机制分析 | 第77-87页 |
5.1 引言 | 第77-78页 |
5.2 材料和方法 | 第78-79页 |
5.2.1 主要试剂和配制 | 第78页 |
5.2.2 前体脂肪细胞的分离及培养 | 第78页 |
5.2.3 细胞活力的检测 | 第78页 |
5.2.4 油红O染色 | 第78页 |
5.2.5 TG含量的检测 | 第78-79页 |
5.2.6 凋亡的检测 | 第79页 |
5.2.7 RNA提取及实时定量PCR(RT-PCR) | 第79页 |
5.2.8 蛋白质免疫印迹 | 第79页 |
5.2.9 数据分析 | 第79页 |
5.3 结果 | 第79-85页 |
5.3.1 EPA对草鱼前体脂肪细胞活力的影响 | 第79-80页 |
5.3.2 ALA对草鱼前体脂肪细胞凋亡的影响 | 第80-82页 |
5.3.3 ALA对草鱼成熟脂肪细胞凋亡的影响 | 第82-83页 |
5.3.4 ALA对草鱼脂肪细胞TG含量的影响 | 第83-84页 |
5.3.5 ALA对草鱼脂肪细胞脂肪酸组成的影响 | 第84-85页 |
5.4 讨论 | 第85-87页 |
第六章 综合讨论与结论 | 第87-90页 |
6.1 EPA及ALA对草鱼脂肪蓄积调控的作用及机制 | 第87-88页 |
6.2 结论 | 第88页 |
6.3 创新点 | 第88页 |
6.4 下一步计划 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-109页 |
附录 | 第109-112页 |
缩略词 | 第112-114页 |
致谢 | 第114-115页 |
作者简介 | 第115-116页 |