| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-38页 |
| ·海水养殖的现状 | 第13-20页 |
| ·国内外海水养殖的发展状况 | 第13-15页 |
| ·水产养殖病害的现状、原因及对策 | 第15-20页 |
| ·有益菌的研究现状 | 第20-25页 |
| ·有益菌的定义 | 第20-21页 |
| ·有益菌作用的方式 | 第21-23页 |
| ·有益菌的筛选 | 第23页 |
| ·有益菌在调节鱼类肠道菌群中的应用 | 第23-25页 |
| ·免疫刺激剂的研究及其应用 | 第25-28页 |
| ·免疫刺激剂的概念 | 第25-26页 |
| ·用于水产养殖的主要免疫刺激剂 | 第26页 |
| ·热激蛋白(Heat shock protein) | 第26-28页 |
| ·免疫刺激剂目前存在的问题和发展前景 | 第28页 |
| ·无菌动物的研究和应用 | 第28-31页 |
| ·无菌动物研究产生的背景 | 第28-29页 |
| ·应用于水产养殖的无菌动物 | 第29-30页 |
| ·卤虫(Artemia,brine shrimp) | 第30-31页 |
| ·海洋细菌分类鉴定的一般步骤 | 第31-35页 |
| ·本论文的研究目的和意义 | 第35-38页 |
| 2 大菱鲜养殖环境微生物区系的初步研究 | 第38-50页 |
| ·引言 | 第38-39页 |
| ·材料和方法 | 第39-43页 |
| ·采样地点和研究对象 | 第39页 |
| ·主要仪器、试剂和培养基 | 第39-40页 |
| ·鱼类样品中总异养菌数和总弧菌数的检测 | 第40页 |
| ·水体的水质因子和样品中总异养菌数和总弧菌数的检测 | 第40-41页 |
| ·水体中总细菌数(AODC)和总活菌数(DVC)的检测 | 第41页 |
| ·菌株的分离、纯化和保种 | 第41-42页 |
| ·革兰氏染色和拮抗菌的筛选 | 第42页 |
| ·应用PCR-RFLP技术分析微生物群落的多样性 | 第42-43页 |
| ·结果 | 第43-48页 |
| ·发病大菱鲆的症状 | 第43页 |
| ·水质因子 | 第43-44页 |
| ·大菱鲆肠道、水体中的总菌数、总活菌数、总异养菌数、总弧菌数 | 第44-46页 |
| ·分离菌株的基因组DNA的提取 | 第46页 |
| ·16 S rDNA序列扩增 | 第46-47页 |
| ·RFLP分析 | 第47页 |
| ·革兰氏染色和拮抗菌的筛选 | 第47页 |
| ·各批次样品分离的菌株数和编号统计 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 3 海洋拮抗菌GJ1的分类鉴定及抑菌谱测定 | 第50-63页 |
| ·引言 | 第50-51页 |
| ·材料和方法 | 第51-55页 |
| ·主要仪器,试剂和培养基 | 第51-52页 |
| ·实验菌株的准备 | 第52页 |
| ·JG1的基因组DNA的提取 | 第52页 |
| ·JG1的16S rDNA扩增 | 第52页 |
| ·16S rDNA序列PCR产物纯化 | 第52-53页 |
| ·16S rDNA序列与TA载体的连接 | 第53-55页 |
| ·结果 | 第55-60页 |
| ·JG1的16S rDNA序列及比对结果 | 第55页 |
| ·JG1系统进化树的构建 | 第55-56页 |
| ·JG1的表型特征 | 第56-58页 |
| ·JG1抑菌效果的测定 | 第58-60页 |
| ·讨论 | 第60-61页 |
| ·小结 | 第61-63页 |
| 4 海洋拮抗菌J61快速检测技术的建立及其在水产动物中的 应用研究 | 第63-77页 |
| ·引言 | 第63-64页 |
| ·材料和方法 | 第64-70页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第64页 |
| ·实验菌株的准备 | 第64-65页 |
| ·实验动物的准备 | 第65页 |
| ·JG1的动物致病性实验 | 第65页 |
| ·基于gyrB基因的JG1的种特异性引物的设计和灵敏度测试 | 第65-67页 |
| ·无菌卤虫系统的制备 | 第67-68页 |
| ·JG1在液体培养基中与VC的对抗情况 | 第68-69页 |
| ·JG1在卤虫对抗VC中的作用 | 第69-70页 |
| ·结果 | 第70-74页 |
| ·JG1对动物的致病性实验 | 第70-71页 |
| ·JG1的gyrB基因 | 第71页 |
| ·JG1的gyrB种特异性引物的特异性 | 第71页 |
| ·JG1的种特异性引物PCR扩增的灵敏度 | 第71-72页 |
| ·液体培养环境下JG1与VC的对抗 | 第72-73页 |
| ·无菌环境下JG1在卤虫对抗VC中的作用 | 第73页 |
| ·JG1在卤虫体内的定植情况 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74-76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 5 无菌和开放环境下产DnaK大肠杆菌对卤虫抵抗坎贝氏弧菌感染的作用研究 | 第77-96页 |
| ·引言 | 第77-78页 |
| ·材料和方法 | 第78-85页 |
| ·实验菌株的准备 | 第78页 |
| ·诱导表达DnaK的大肠杆菌的制备 | 第78页 |
| ·无菌卤虫系统的制备 | 第78-79页 |
| ·实验日常管理及投喂策略 | 第79页 |
| ·YS2对卤虫营养贡献力的研究 | 第79页 |
| ·无菌环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第79页 |
| ·开放环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第79-80页 |
| ·开放环境下大体积饲养卤虫的最适密度和最佳投喂方式 | 第80页 |
| ·大体积开放环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第80-81页 |
| ·开放环境下YS2对卤虫体内微生物区系的影响研究 | 第81-85页 |
| ·统计分析 | 第85页 |
| ·结果 | 第85-91页 |
| ·YS2对卤虫营养贡献力的研究 | 第85页 |
| ·无菌环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第85-86页 |
| ·开放环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第86页 |
| ·开放环境下大体积饲养卤虫的最适密度和最佳投喂方式 | 第86-87页 |
| ·大体积开放环境下YS2对卤虫对抗坎贝氏弧菌VC的影响 | 第87-88页 |
| ·巢氏PCR扩增细菌16S rDNA V3区 | 第88-89页 |
| ·变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第89-91页 |
| ·讨论 | 第91-94页 |
| ·小结 | 第94-96页 |
| 6 全文总结 | 第96-98页 |
| ·主要研究结论 | 第96页 |
| ·主要创新点 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-119页 |
| 附录 | 第119-125页 |
| 致谢 | 第125页 |
