| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 主要符号对照表 | 第10-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 真菌多糖的研究概况 | 第11-14页 |
| 1.1.1 真菌多糖的简介及其提取、分离和纯化 | 第11-12页 |
| 1.1.2 真菌多糖的结构 | 第12页 |
| 1.1.3 真菌多糖的免疫调节活性 | 第12-13页 |
| 1.1.4 真菌多糖构效关系研究进展 | 第13页 |
| 1.1.5 真菌多糖免疫调节机制研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 松茸及其多糖的研究概况 | 第14-16页 |
| 1.2.1 松茸简介 | 第14页 |
| 1.2.2 松茸的化学成分以及药理作用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 松茸多糖的研究概况 | 第15-16页 |
| 1.3 本课题研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 1.4 本课题研究的技术路线和主要内容 | 第17-18页 |
| 1.4.1 本课题研究的技术路线 | 第17页 |
| 1.4.2 研究的主要内容 | 第17-18页 |
| 第2章 实验材料和方法 | 第18-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.2 实验所用主要试剂及其主要溶液和其配方 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-32页 |
| 2.2.1 细胞复苏、传代与冻存 | 第20-21页 |
| 2.2.2 CCK-8 法检测TMP-A对Raji细胞增殖的影响 | 第21-22页 |
| 2.2.3 CCK-8 法检测TMP-A对Jurkat细胞增殖的影响 | 第22页 |
| 2.2.4 CCK-8 法检测TMP-A对RAW264.7 细胞增殖的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.5 碘化丙啶染色流式细胞术检测TMP-A对RAW264.7 细胞周期的影响 | 第23页 |
| 2.2.6 中性红法检测TMP-A对RAW264.7 细胞吞噬功能的影响 | 第23-24页 |
| 2.2.7 经典的Griess Reagent法检测TMP-A对RAW264.7 细胞释放NO水平 | 第24页 |
| 2.2.8 ELISA法检测TMP-A对RAW264.7 细胞释放细胞因子水平 | 第24-26页 |
| 2.2.9 实时荧光定量PCR法检测TMP-A对RAW264.7 细胞的TNF-α、IL-6、IL-1β、iNOS的mRNA表达影响 | 第26-29页 |
| 2.2.10 Western Blot法检测TMP-A对RAW264.7 细胞的iNOS、COX-2 蛋白表达 | 第29-31页 |
| 2.2.11 数据统计分析方法 | 第31-32页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第32-47页 |
| 3.1 TMP-A对Raji细胞增殖的影响 | 第32-33页 |
| 3.2 TMP-A对Jurkat细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 TMP-A对RAW264.7 细胞增殖的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 TMP-A对RAW264.7 细胞周期的影响 | 第35页 |
| 3.5 TMP-A对RAW264.7 细胞吞噬中性红能力的影响 | 第35-36页 |
| 3.6 TMP-A对RAW264.7 细胞释放NO的影响 | 第36-37页 |
| 3.7 TMP-A对RAW264.7 细胞分泌细胞因子的影响 | 第37-40页 |
| 3.7.1 TMP-A对RAW264.7 细胞分泌细胞TNF-α 的影响 | 第37-39页 |
| 3.7.2 TMP-A对RAW264.7 细胞分泌细胞IL-6 的影响 | 第39-40页 |
| 3.8 TMP-A对RAW264.7 细胞内细胞因子以及iNOS的mRNA表达的影响 | 第40-45页 |
| 3.8.1 RAW264.7 细胞总RNA提取结果 | 第40页 |
| 3.8.2 引物的扩增效率 | 第40页 |
| 3.8.3 SYBR-Green法荧光定量PCR检测TNF-α、IL-6、IL-1β、iNOS的mRNA相对表达结果 | 第40-45页 |
| 3.9 TMP-A对RAW264.7 细胞内iNOS及COX-2 蛋白表达的影响 | 第45-47页 |
| 第4章 结论与展望 | 第47-48页 |
| 4.1 结论 | 第47页 |
| 4.2 展望 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-56页 |
| 附录 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59-62页 |
| 在学期间的科研情况 | 第62页 |
