| 提要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第一部分 兔眼玻璃体切割术后并发性白内障动物模型的建立 | 第13-22页 |
| 实验目的 | 第13页 |
| 材料与方法 | 第13-15页 |
| 1 实验动物和分组 | 第13页 |
| 2 实验仪器和耗材 | 第13-14页 |
| 3 手术过程 | 第14-15页 |
| ·手术前准备 | 第14页 |
| ·手术步骤 | 第14-15页 |
| 4 术后观察 | 第15页 |
| ·裂隙灯显微镜及眼底镜观察 | 第15页 |
| ·眼压测定 | 第15页 |
| 5 统计学分析方法 | 第15页 |
| 结果 | 第15-17页 |
| 1 玻切术后眼压的改变 | 第15-16页 |
| 2 玻切术后晶状体透明度的改变 | 第16-17页 |
| 讨论 | 第17-19页 |
| 1 兔眼玻璃体切割术后并发性白内障模型的建立 | 第17-19页 |
| ·BSS组模型的建立 | 第17-18页 |
| ·C3F8组模型建立 | 第18页 |
| ·硅油组模型的建立 | 第18-19页 |
| 2 兔眼玻璃体切割术后并发性白内障的发生原因分析 | 第19页 |
| 结语 | 第19-20页 |
| 参考文献 | 第20-22页 |
| 第二部分 兔眼玻璃体切割术后前房氧浓度和炎性因子的改变 | 第22-31页 |
| 实验目的 | 第22页 |
| 材料与方法 | 第22-24页 |
| 1 实验动物 | 第22页 |
| 2 主要仪器和试剂 | 第22页 |
| 3 实验方法 | 第22-24页 |
| ·房水中氧浓度的检测 | 第22-23页 |
| ·房水中炎性因子IL-2和TNF-α的检测 | 第23-24页 |
| 4 统计学方法 | 第24页 |
| 结果 | 第24-26页 |
| 1 玻切术后房水中氧浓度的改变 | 第24-25页 |
| 2 玻切术后房水中炎性因子的改变 | 第25-26页 |
| 讨论 | 第26-29页 |
| 1 玻璃体切割术后并发性白内障的发生与房水中氧浓度改变的相关性 | 第26-28页 |
| 2 玻璃体切割术后并发性白内障的发生与房水中炎性因子改变的相关性 | 第28-29页 |
| 结语 | 第29页 |
| 参考文献 | 第29-31页 |
| 第三部分 玻璃体切割术后兔晶状体纤维细胞凋亡及caspase-8的表达 | 第31-40页 |
| 实验目的 | 第31页 |
| 材料与方法 | 第31-34页 |
| 1 材料 | 第31-32页 |
| ·实验动物 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31-32页 |
| ·实验试剂 | 第32页 |
| 2 动物模型建立与分组 | 第32页 |
| ·动物分组 | 第32页 |
| ·动物模型建立 | 第32页 |
| 3 实验方法 | 第32-34页 |
| ·病理学观察晶状体纤维细胞形态 | 第32-33页 |
| ·末端脱氧核苷酸转移酶(TDT)介导的原位末端转移酶标记TUNEL法检测晶状体纤维细胞凋亡 | 第33页 |
| ·晶状体纤维细胞Caspase-8检测 | 第33-34页 |
| 4 统计学分析方法 | 第34页 |
| 结果 | 第34-35页 |
| 1 晶状体纤维细胞形态学观察 | 第34页 |
| 2 晶状体纤维细胞凋亡的检测 | 第34-35页 |
| 3 Caspase-8活性的检测 | 第35页 |
| 讨论 | 第35-38页 |
| 1 晶状体纤维细胞的结构 | 第35-36页 |
| 2 TUNEL法检测玻璃体切割术后晶状体纤维细胞凋亡的变化及意义 | 第36页 |
| 3 玻璃体切割术后晶状体纤维细胞Caspase-8的表达及意义 | 第36-37页 |
| 4 晶状体纤维细胞细胞凋亡与并发性白内障的关系 | 第37-38页 |
| 结语 | 第38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 第四部分 DLAD基因在玻璃体切割术后晶状体上的表达 | 第40-50页 |
| 实验目的 | 第40页 |
| 材料与方法 | 第40-44页 |
| 1 动物模型的建立与材料 | 第40-42页 |
| ·实验动物和分组 | 第40页 |
| ·主要实验仪器 | 第40-41页 |
| ·主要实验用试剂 | 第41-42页 |
| 2 实验方法 | 第42-44页 |
| ·组织材料的制备 | 第42页 |
| ·半定量RT-PCR方法 | 第42-44页 |
| 3 统计方法 | 第44页 |
| 结果 | 第44-47页 |
| 1 A组DLAD mRNA的表达情况 | 第44-45页 |
| 2 B组DLAD mRNA的表达情况 | 第45页 |
| 3 C组DLAD mRNA的表达情况 | 第45-46页 |
| 4 术后1d、3d、7d、1m、3m,同一时间点三组DLAD mRNA表达的比较 | 第46-47页 |
| 讨论 | 第47-48页 |
| 结语 | 第48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第五部分 玻璃体切割联合硅油填充术后晶状体的基因表达谱的变化 | 第50-108页 |
| 实验目的 | 第50页 |
| 材料与方法 | 第50-64页 |
| 1 实验动物和分组 | 第50页 |
| 2 主要仪器与试剂 | 第50-52页 |
| 3 标本采集 | 第52页 |
| 4 基因芯片检测 | 第52-61页 |
| ·晶状体组织总RNA样品制备步骤 | 第52-55页 |
| ·准备标记反应 | 第55-56页 |
| ·标记/扩增的RNA的纯化和标记cDNA的质量控制 | 第56-57页 |
| ·杂交 | 第57-58页 |
| ·芯片洗涤 | 第58-59页 |
| ·结果扫描 | 第59-60页 |
| ·数据提取 | 第60-61页 |
| 5 应用实时定量荧光PCR对基因芯片结果进行验证分析 | 第61-64页 |
| ·组织RNA的抽提和质量检测同基因芯片检测中4.1步骤 | 第61页 |
| ·使用样品的RNA进行cDNA合成 | 第61-62页 |
| ·合成的cDNA用于实时定量PCR | 第62-63页 |
| ·结果与计算 | 第63-64页 |
| 结果 | 第64-92页 |
| 1 四组晶状体RNA的提取结果 | 第64页 |
| 2 每组芯片杂交结果示意图 | 第64-65页 |
| 3 芯片杂交信号强度的散点图 | 第65-66页 |
| 4 差异表达基因及功能 | 第66-83页 |
| ·玻璃体切割硅油填充术后3天差异表达的基因 | 第66页 |
| ·玻璃体切割硅油填充术后1月差异表达的基因 | 第66页 |
| ·术后3月差异表达的基因 | 第66-83页 |
| 5 共差异表达基因及功能 | 第83-86页 |
| 6 聚类分析结果 | 第86页 |
| 7 实时定量荧光PCR技术对芯片结果进行验证结果 | 第86-92页 |
| ·内标AGPDH基因的溶解曲线、扩增曲线、标准曲线、及数据结果 | 第86-87页 |
| ·BFSP2基因的溶解曲线、扩增曲线、标准曲线、及数据结果 | 第87-89页 |
| ·CAPNS1基因的溶解曲线、扩增曲线、标准曲线、及数据结果 | 第89-91页 |
| ·待测基因以内参校正 | 第91-92页 |
| 讨论 | 第92-96页 |
| 结语 | 第96页 |
| 参考文献 | 第96-108页 |
| 附录 | 第108-114页 |
| 附中英文对照表 | 第114-115页 |
| 科研课题 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 查新报告 | 第117-131页 |
| 发表论文 | 第131-147页 |
| 详细摘要 | 第147-153页 |
