| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第9-18页 |
| 第一部分 不同来源的CIK细胞诱导 | 第18-30页 |
| 前言 | 第18页 |
| 1 材料与方法 | 第18-22页 |
| 1.1 实验样本 | 第18-19页 |
| 1.2 主要仪器 | 第19页 |
| 1.3 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第20页 |
| 1.5 实验方法与步骤 | 第20-22页 |
| 1.5.1 CIK细胞的分离培养 | 第20-21页 |
| 1.5.2 细胞计数 | 第21页 |
| 1.5.3 流式细胞术检测不同来源的CIK细胞表面标记的表达 | 第21页 |
| 1.5.4 统计学方法 | 第21-22页 |
| 2 结果 | 第22-27页 |
| 2.1 形态学观察不同来源的CIK细胞 | 第22-23页 |
| 2.2 不同来源的CIK细胞生长情况 | 第23页 |
| 2.3 CB-CIK细胞诱导过程中细胞亚群变化 | 第23-25页 |
| 2.4 PB-CIK 细胞诱导过程中细胞亚群变化 | 第25-26页 |
| 2.5 不同来源CIK细胞亚群比较 | 第26-27页 |
| 3 结论 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 第二部分 CIK细胞凋亡对其体外杀伤肿瘤功能的影响 | 第30-41页 |
| 1 材料与方法 | 第30-33页 |
| 1.1 实验样本 | 第30-31页 |
| 1.2 主要仪器 | 第31页 |
| 1.3 主要试剂 | 第31页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第31页 |
| 1.5 主要实验方法与步骤 | 第31-33页 |
| 1.5.1 宫颈癌细胞株HeLa细胞培养 | 第31-32页 |
| 1.5.2 流式细胞术检测CIK细胞凋亡及死亡受体Fas（CD95）的表达 | 第32页 |
| 1.5.3 CIK细胞与宫颈癌细胞株HeLa以不同的效靶比共培养 | 第32页 |
| 1.5.4 检测CIK细胞在不同效靶比杀伤肿瘤细胞后的凋亡水平 | 第32页 |
| 1.5.5 Calcein-AM法检测CIK细胞对肿瘤细胞的杀伤效果 | 第32-33页 |
| 1.5.6 检测caspase3,8,9抑制剂处理CIK细胞后CIK细胞凋亡与肿瘤抑制率 | 第33页 |
| 1.5.7 统计学方法 | 第33页 |
| 2 结果 | 第33-39页 |
| 2.1 不同来源CIK细胞Fas表达及细胞凋亡水平 | 第33-34页 |
| 2.2 CB-CIK细胞凋亡影响其体外杀伤肿瘤水平 | 第34-37页 |
| 2.3 Caspase3，Caspase8，Caspase9抑制剂对CB-CIK细胞杀伤肿瘤细胞效果的影响 | 第37-39页 |
| 3 结论 | 第39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第三部分 c-FLIP在CIK细胞凋亡中的作用 | 第41-55页 |
| 前言 | 第41页 |
| 1 材料与方法 | 第41-50页 |
| 1.1 实验样本 | 第41-42页 |
| 1.2 主要仪器 | 第42页 |
| 1.3 主要试剂 | 第42-43页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第43-45页 |
| 1.5 实验方法与步骤 | 第45-50页 |
| 1.5.1 流式细胞术检测CIK细胞凋亡水平 | 第45页 |
| 1.5.2 RT-PCR检测CIK细胞中c-FLIP在mRNA水平的表达 | 第45-48页 |
| 1.5.3 Western Blot检测CIK细胞中相关基因在蛋白水平的表达 | 第48-50页 |
| 1.5.4 统计学方法 | 第50页 |
| 2 结果 | 第50-53页 |
| 2.1 CIK诱导过程中凋亡水平 | 第50-51页 |
| 2.2.c-FLIP mRNA在CB-CIK诱导过程中的表达 | 第51-52页 |
| 2.3.c-FLIP蛋白在CB-CIK诱导过程中的表达 | 第52-53页 |
| 3 结论 | 第53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-66页 |
| 附录一 英文缩写词表 | 第66-67页 |
| 附录二 攻读学位期间发表的论文专利及参加科研情况 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
