| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 研究现状、成果 | 第14-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、缺氧环境下雷公藤甲素对HUVECs中HIF1α 和VEGF表达的影响 | 第18-32页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-26页 |
| 1.1.1 研究材料 | 第18页 |
| 1.1.2 主要仪器及设备 | 第18页 |
| 1.1.3 实验材料及试剂 | 第18-20页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第20-25页 |
| 1.1.5 实验分组 | 第25-26页 |
| 1.1.6 统计学方法 | 第26页 |
| 1.2 结果 | 第26-29页 |
| 1.2.1 不同TP浓度对HIF1α 蛋白表达的影响 | 第26页 |
| 1.2.2 TP最适加药浓度及时间的验证 | 第26-27页 |
| 1.2.3 HIF1α 在细胞中表达和定位 | 第27-28页 |
| 1.2.4 TP处理后对VEGF蛋白表达的影响 | 第28-29页 |
| 1.2.5 KC7F2对HIF1α 和VEGF表达的影响 | 第29页 |
| 1.3 讨论 | 第29-31页 |
| 1.4 小结 | 第31-32页 |
| 二、TP对TGF-β1 诱导的EMT相关指标的影响 | 第32-55页 |
| 2.1 对象与方法 | 第32-33页 |
| 2.1.1 研究材料 | 第32页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第32页 |
| 2.1.3 实验材料和试剂 | 第32-33页 |
| 2.1.4 实验分组 | 第33页 |
| 2.2 RNA测序 | 第33-40页 |
| 2.2.1 HK-2 细胞total RNA的提取 | 第33-34页 |
| 2.2.2 RNA测序实验流程 | 第34-36页 |
| 2.2.3 数据的质量控制 | 第36-38页 |
| 2.2.4 数据的分析 | 第38-40页 |
| 2.3 结果 | 第40-48页 |
| 2.3.1 单个基因的表达定量 | 第40-41页 |
| 2.3.2 两重复样本的重复相关性分析 | 第41-42页 |
| 2.3.3 差异表达基因的筛选 | 第42-44页 |
| 2.3.4 差异表达基因的进一步分析 | 第44页 |
| 2.3.5 差异表达基因的KEGG通路富集分析 | 第44-46页 |
| 2.3.6 TP对细胞间粘附的影响 | 第46-48页 |
| 2.4 候选通路的验证 | 第48-50页 |
| 2.4.1 方法 | 第48-49页 |
| 2.4.2 结果 | 第49-50页 |
| 2.5 讨论 | 第50-53页 |
| 2.6 小结 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第62-63页 |
| 附录 | 第63-70页 |
| 综述 雷公藤甲素的抗肿瘤、抗炎机制的研究现状 | 第70-89页 |
| 综述参考文献 | 第82-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 个人简历 | 第90页 |
