| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 材料与方法 | 第13-21页 |
| 1.1 材料 | 第13-15页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第13页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第13-14页 |
| 1.1.4 实验设备 | 第14-15页 |
| 1.2 大鼠BMSCs分化潜能的鉴定方法 | 第15-16页 |
| 1.2.1 干细胞提取与培养 | 第15页 |
| 1.2.2 多聚赖氨酸防脱片的制备 | 第15-16页 |
| 1.2.3 软骨方向鉴定 | 第16页 |
| 1.2.4 甲苯胺蓝染色 | 第16页 |
| 1.2.5 番红素O染色 | 第16页 |
| 1.3 丝素蛋白复合胶原蛋白支架的制备 | 第16-17页 |
| 1.3.1 丝素蛋白制备 | 第16-17页 |
| 1.3.2 胶原蛋白制备 | 第17页 |
| 1.3.3 制备支架 | 第17页 |
| 1.4 复合支架性能检测 | 第17-19页 |
| 1.4.1 孔隙率测定 | 第17页 |
| 1.4.2 吸水膨胀率测 | 第17页 |
| 1.4.3 力学性能检测 | 第17页 |
| 1.4.4 孔径测定 | 第17-18页 |
| 1.4.5MTT检测细胞相容性 | 第18页 |
| 1.4.6 HE染色观察 | 第18页 |
| 1.4.7 扫描电镜观察 | 第18-19页 |
| 1.5 阿利新蓝法测定培养液上清中糖胺多糖的含量 | 第19页 |
| 1.5.1 组织工程化培养模型的建立 | 第19页 |
| 1.5.2 实验原理 | 第19页 |
| 1.5.3 实验方法 | 第19页 |
| 1.6 免疫组化检测Ⅱ型胶原 | 第19-20页 |
| 1.6.1 实验原理 | 第19页 |
| 1.6.2.实验方法 | 第19-20页 |
| 1.7 统计学分析 | 第20-21页 |
| 结果 | 第21-24页 |
| 1.8 | 第21-24页 |
| 1.8.1 大鼠BMSCs的提取 | 第21页 |
| 1.8.2 大鼠BMSCs的原代培养与扩增 | 第21页 |
| 1.8.3 大鼠BMSCs的软骨分化潜能的鉴定 | 第21页 |
| 1.8.4 SF/ COL组织工程支架的制备及其理化性质的检测 | 第21-22页 |
| 1.8.5 组织工程化培养模型成软骨能力的检测 | 第22-24页 |
| 1.8.5.1 组织工程化培养模型的的建立 | 第22页 |
| 1.8.5.2 诱导后培养模型分泌糖胺多糖含量的变化 | 第22-23页 |
| 1.8.5.3 诱导培养模型免疫组织化鉴定 | 第23-24页 |
| 附图 | 第24-32页 |
| 附表 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-39页 |
| 1.9 | 第33-39页 |
| 1.9.1 种子细胞的来源、分离及其稳定扩增 | 第33-34页 |
| 1.9.2 支架材料的选择及制备 | 第34-36页 |
| 1.9.2.1 支架材料的选择 | 第34-35页 |
| 1.9.2.2 支架制备方法 | 第35页 |
| 1.9.2.3 支架的理化性质 | 第35-36页 |
| 1.9.2.4 支架的细胞相容性 | 第36页 |
| 1.9.3 生长因子及其作用方式的选择 | 第36-37页 |
| 1.9.3.1 生长因子的选择 | 第36-37页 |
| 1.9.3.2 生长因子作用方式的选择 | 第37页 |
| 1.9.4 软骨分化程度指标及其意义 | 第37-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第42-43页 |
| 综述 软骨组织工程研究进展 | 第43-54页 |
| 综述参考文献 | 第50-54页 |
| 致谢 | 第54页 |