摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
第一章 绪论 | 第10-22页 |
1.1 研究背景 | 第10-11页 |
1.2 生物制氢方法 | 第11-15页 |
1.2.1 光解水制氢 | 第11-12页 |
1.2.2 暗发酵制氢 | 第12-13页 |
1.2.3 光发酵制氢 | 第13-15页 |
1.3 生物产氢的研究进展 | 第15-18页 |
1.3.1 生物产氢的相关酶 | 第15页 |
1.3.2 高效光合菌株的筛选 | 第15-16页 |
1.3.3 光合产氢的影响因素 | 第16-18页 |
1.4 混合菌种光合制氢研究的意义 | 第18-19页 |
1.5 课题的研究内容及意义 | 第19-22页 |
1.5.1 课题的研究内容 | 第19页 |
1.5.2 课题的研究意义 | 第19-20页 |
1.5.3 技术路线 | 第20-22页 |
第二章 实验材料及方法 | 第22-28页 |
2.1 实验材料 | 第22-25页 |
2.1.1 实验仪器与设备 | 第22-23页 |
2.1.2 实验药品 | 第23-24页 |
2.1.3 主要试剂 | 第24-25页 |
2.1.4 培养基 | 第25页 |
2.2 实验方法 | 第25-26页 |
2.3 主要参数的测定方法 | 第26-28页 |
2.3.1 菌密度的测定 | 第26页 |
2.3.2 光照强度的测定 | 第26页 |
2.3.3 葡萄糖浓度的测定--DNS法 | 第26-27页 |
2.3.4 氢气含量的测定 | 第27-28页 |
第三章 混合菌群富集培养及其生理特性研究 | 第28-34页 |
3.1 混合菌群的富集培养 | 第28-29页 |
3.1.1 试验菌种采集 | 第28页 |
3.1.2 混合菌种的富集 | 第28-29页 |
3.2 菌群鉴定--高通量测序 | 第29-32页 |
3.2.1 DNA的提取和纯化方法 | 第29页 |
3.2.2 PCR扩增(Polymerase Chain Reaction) | 第29-30页 |
3.2.3 生物信息学分析 | 第30-32页 |
3.3 菌群保藏 | 第32-33页 |
3.4 本章小结 | 第33-34页 |
第四章 混合菌群NG07的光合生长特性的研究 | 第34-38页 |
4.1 引言 | 第34页 |
4.2 碳源对混合菌群NG07生长的影响 | 第34-36页 |
4.2.1 不同碳源对混合菌群NG07生长的影响 | 第34-35页 |
4.2.2 乙酸钠浓度对混合菌群NG07生长的影响 | 第35-36页 |
4.3 氮源对混合菌群NG07生长的影响 | 第36-37页 |
4.3.1 不同氮源对混合菌群NG07生长的影响 | 第36-37页 |
4.3.2 硫酸铵浓度对混合菌群NG07生长的影响 | 第37页 |
4.4 本章小结 | 第37-38页 |
第五章 混合菌群NG07的光合产氢特性的研究 | 第38-56页 |
5.1 引言 | 第38页 |
5.2 碳源对混合菌群NG07产氢的影响 | 第38-42页 |
5.2.1 不同碳源对混合菌群NG07产氢的影响 | 第38-39页 |
5.2.2 葡萄糖浓度对混合菌群NG07产氢的影响 | 第39-42页 |
5.3 氮源对混合菌群NG07产氢的影响 | 第42-44页 |
5.3.1 不同氮源对混合菌群NG07产氢的影响 | 第42-43页 |
5.3.2 尿素浓度对混合菌群NG07产氢的影响 | 第43-44页 |
5.4 Fe~(2+)浓度对混合菌群NG07产氢的影响 | 第44-46页 |
5.5 搅拌对混合菌群NG07产氢的影响 | 第46-47页 |
5.6 温度对混合菌群NG07产氢的影响 | 第47-49页 |
5.7 光照条件对混合菌群NG07产氢的影响 | 第49-51页 |
5.8 固定化技术对混合菌群NG07产氢的影响 | 第51-53页 |
5.9 本章小结 | 第53-56页 |
第六章 混合菌群NG07产氢条件的响应曲面法优化 | 第56-64页 |
6.1 引言 | 第56页 |
6.2 响应曲面实验设计 | 第56-58页 |
6.3 实验模型的建立 | 第58-59页 |
6.4 响应面分析与优化 | 第59-62页 |
6.5 本章小结 | 第62-64页 |
第七章 结论与建议 | 第64-66页 |
7.1 结论 | 第64-65页 |
7.2 后续实验建议 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-74页 |
致谢 | 第74-76页 |
硕士期间发表论文 | 第76页 |