摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
引言 | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1.1 肠道菌群的概况 | 第11-14页 |
1.1.1 具有重要生理学意义的肠道菌群 | 第11页 |
1.1.2 影响肠道菌群代谢的因素 | 第11-12页 |
1.1.3 肠道菌群与宿主的相互关系 | 第12-13页 |
1.1.4 研究肠道菌群的分子分析技术 | 第13-14页 |
1.2 代谢组学在肠道菌群研究中的运用 | 第14-17页 |
1.2.1 代谢组学定义 | 第14页 |
1.2.2 代谢组学的研究方法 | 第14-15页 |
1.2.3 基于NMR的代谢组学在肠道微生态研究中的运用 | 第15页 |
1.2.4 基于NMR的代谢组学的研究方法 | 第15页 |
1.2.5 多变量统计分析方法在代谢组学和肠道菌群中的运用 | 第15-17页 |
1.3 本论文的研究背景及内容 | 第17-20页 |
1.3.1 研究背景 | 第17-18页 |
1.3.2 研究内容 | 第18-20页 |
第二章 实验设计与动物实验 | 第20-24页 |
2.1 引言 | 第20页 |
2.2 仪器与试药 | 第20页 |
2.2.1 仪器 | 第20页 |
2.2.2 药品与试剂 | 第20页 |
2.3 实验方法 | 第20-21页 |
2.3.1 实验动物 | 第20页 |
2.3.2 动物模型的建立 | 第20-21页 |
2.3.3 样品收集 | 第21页 |
2.4 实验结果 | 第21-22页 |
2.4.1 大鼠生理状态的变化 | 第21页 |
2.4.2 大鼠体重变化 | 第21-22页 |
2.5 讨论 | 第22-23页 |
2.5.1 肠道菌群失调模型的建立 | 第22页 |
2.5.2 林可霉素致大鼠腹泻及促进大鼠体重增长 | 第22页 |
2.5.3 实验动物与给药剂量的选择 | 第22页 |
2.5.4 样品采集与分析方法的的选择 | 第22-23页 |
2.6 小结 | 第23-24页 |
第三章 基于PCR-DGGE的林可霉素干预对肠道菌群组成的影响 | 第24-32页 |
3.1 引言 | 第24页 |
3.2 仪器与试药 | 第24页 |
3.2.1 仪器 | 第24页 |
3.2.2 试剂 | 第24页 |
3.3 实验方法 | 第24-26页 |
3.3.1 大鼠粪便样本总DNA的提取 | 第24页 |
3.3.2 优势细菌和两个类群细菌的扩增 | 第24-25页 |
3.3.3 变性梯度凝胶电泳的分析 | 第25页 |
3.3.4 DGGE条带的回收与鉴定 | 第25-26页 |
3.3.5 DGGE谱图分析 | 第26页 |
3.4 实验结果 | 第26-30页 |
3.4.1 粪便细菌优势细菌16S rDNA V3区DGGE图谱分析 | 第26-30页 |
3.4.2 粪便两个类群细菌16S rDNA V3区DGGE图谱分析 | 第30页 |
3.5 讨论 | 第30-31页 |
3.5.1 林可霉素干预对粪便细菌优势细菌的影响 | 第30-31页 |
3.5.2 林可霉素干预对粪便两个类群细菌的影响 | 第31页 |
3.6 小结 | 第31-32页 |
第四章 基于NMR的林可霉素干预对宿主肠道菌群代谢的影响 | 第32-50页 |
4.1 引言 | 第32页 |
4.2 仪器与试药 | 第32页 |
4.2.1 仪器 | 第32页 |
4.2.2 试剂 | 第32页 |
4.3 实验方法 | 第32-34页 |
4.3.1 粪便和尿液的NMR检测样品配制 | 第32-33页 |
4.3.2 尿样和粪样数据采集 | 第33页 |
4.3.3 核磁数据的预处理和多变量统计分析 | 第33-34页 |
4.3.4 粪便NMR数据与DGGE数据的整合分析 | 第34页 |
4.4 实验结果 | 第34-46页 |
4.4.1 粪样和尿样代谢物的归属 | 第34-38页 |
4.4.2 粪样和尿样代谢物的多变量统计分析 | 第38-45页 |
4.4.3 粪样代谢物与肠道菌群关联系分析 | 第45-46页 |
4.5 讨论 | 第46-49页 |
4.5.1 代谢物组的动态变化 | 第46页 |
4.5.2 粪样和尿样中差异代谢物分析 | 第46-49页 |
4.6 小结 | 第49-50页 |
结语 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-58页 |
在校期间发表论文情况 | 第58-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
统计学审核证明 | 第61页 |