中文摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
1 综述 | 第11-20页 |
1.1 植物免疫 | 第11-12页 |
1.2 激发子 | 第12-16页 |
1.2.1 激发子的类型 | 第12-14页 |
1.2.2 激发子信号转导 | 第14-15页 |
1.2.3 激发子识别后防卫反应 | 第15-16页 |
1.3 植物糖基转移酶研究进展 | 第16-17页 |
1.4 植物小G蛋白研究进展 | 第17-20页 |
1.4.1 小G蛋白 | 第17-19页 |
1.4.2 Ran类小G蛋白 | 第19-20页 |
2 引言 | 第20-21页 |
3 材料和方法 | 第21-31页 |
3.1 材料 | 第21-23页 |
3.1.1 植物材料 | 第21页 |
3.1.2 菌株和载体 | 第21页 |
3.1.3 酶和化学试剂 | 第21页 |
3.1.4 培养基和试剂配制 | 第21-23页 |
3.2 方法 | 第23-31页 |
3.2.1 植物的种植 | 第23页 |
3.2.2 基因组DNA提取 | 第23页 |
3.2.3 植物总RNA提取 | 第23页 |
3.2.4 AtGT7和AtRAN1基因在不同组织中的转录表达分析 | 第23-25页 |
3.2.5 AtGT7在保卫细胞中定位分析 | 第25-26页 |
3.2.6 AtRAN1在保卫细胞中定位分析 | 第26-27页 |
3.2.7 AtGT7纯合突变体筛选验证 | 第27页 |
3.2.8 酵母双杂交筛选AtRAN1互作蛋白 | 第27-29页 |
3.2.9 双分子荧光互补验证AtRAN1互作蛋白 | 第29页 |
3.2.10 AtRAN1纯合突变体筛选验证 | 第29页 |
3.2.11 气孔开度测量 | 第29-30页 |
3.2.12 保卫细胞中NO、AOS测量 | 第30页 |
3.2.13 失水试验 | 第30页 |
3.2.14 抗病性测定 | 第30-31页 |
4 结果与分析 | 第31-49页 |
4.1 拟南芥AtGT7在激发子诱导气孔关闭中的功能研究 | 第31-37页 |
4.1.1 AtGT7表达分析 | 第31-32页 |
4.1.2 AtGT7纯合突变体筛选验证 | 第32页 |
4.1.3 AtGT7调控拟南芥耐旱性分析 | 第32-33页 |
4.1.4 AtGT7参与Flg22诱导的气孔关闭 | 第33-34页 |
4.1.5 AtGT7参与Flg22诱导的NO的产生 | 第34页 |
4.1.6 AtGT7参与Flg22诱导的AOS的产生 | 第34-35页 |
4.1.7 Flg22处理后,AtGT7不参与拟南芥对灰霉病的抗病性 | 第35-36页 |
4.1.8 AtGT7参与Flg22诱导的拟南芥的对Pst DC3000的抗病性 | 第36页 |
4.1.9 小结与讨论 | 第36-37页 |
4.2 拟南芥AtRAN1在激发子诱导气孔关闭中的功能研究 | 第37-49页 |
4.2.1 AtRAN1表达分析 | 第37-38页 |
4.2.1.1 AtRAN1在保卫细胞中表达预测分析 | 第37页 |
4.2.1.2 AtRAN1在不同组织中的转录表达分析 | 第37-38页 |
4.2.2 AtRAN1在保卫细胞中定位分析 | 第38页 |
4.2.3 AtRAN1互作蛋白筛选验证 | 第38-41页 |
4.2.4 AtRAN1纯合突变体植株筛选验证 | 第41-42页 |
4.2.5 AtRAN1调控拟南芥耐旱性分析 | 第42页 |
4.2.6 AtRAN1和AtRANBP1B均参与Chitin诱导的气孔关闭 | 第42-43页 |
4.2.7 AtRAN1和AtRANBP1B参与Chitin诱导的NO的产生 | 第43-44页 |
4.2.8 AtRAN1和AtRANBP1B参与Chitin诱导的AOS的产生 | 第44-45页 |
4.2.9 Chitin处理后,AtRAN1和AtRANBP1B对拟南芥抗灰霉病、Pst DC3000的影响 | 第45-46页 |
4.2.10 小结与讨论 | 第46-49页 |
参考文献 | 第49-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
作者简介 | 第62页 |