| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9页 |
| 一 绪论 | 第14-31页 |
| 1.1 黄精多糖的研究进展 | 第14-24页 |
| 1.1.1 黄精多糖的优化提取 | 第14-17页 |
| 1.1.2 黄精多糖的化学结构 | 第17-19页 |
| 1.1.3 黄精多糖的药理活性 | 第19-24页 |
| 1.2 肠促胰素GLP-1的研究进展 | 第24-29页 |
| 1.2.1 肠促胰素的研究进展 | 第24-25页 |
| 1.2.2 GLP-1的研究进展 | 第25-29页 |
| 1.3 本论文研究的目的及主要内容 | 第29-31页 |
| 1.3.1 本论文研究的目的 | 第29页 |
| 1.3.2 本论文研究的主要内容 | 第29-31页 |
| 二 材料和方法 | 第31-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.2 主要试剂 | 第31-32页 |
| 2.3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 2.4 实验方法 | 第33-39页 |
| 2.4.1 多花黄精不同组分的制备 | 第33-34页 |
| 2.4.1.1 多花黄精不同提取组分的制备 | 第34页 |
| 2.4.1.2 多花黄精粗多糖PCP的初步分离 | 第34页 |
| 2.4.1.3 多花黄精水洗糖PCP1纯化 | 第34页 |
| 2.4.2 多花黄精不同组分体外活性筛选评价 | 第34-35页 |
| 2.4.2.1 肠道L细胞NCI-H716细胞培养 | 第34-35页 |
| 2.4.2.2 NCI-H716细胞生长曲线绘制 | 第35页 |
| 2.4.2.3 多花黄精不同组分细胞毒性检测 | 第35页 |
| 2.4.2.4 多花黄精不同组分GLP-1分泌的评价 | 第35页 |
| 2.4.3 多花黄精高活性组分多糖PCP11的理化性质分析 | 第35-37页 |
| 2.4.3.1 分子量和纯度 | 第35-36页 |
| 2.4.3.2 碳水化合物含量测定 | 第36页 |
| 2.4.3.3 糖醛酸含量测定 | 第36-37页 |
| 2.4.3.4 蛋白质含量测定 | 第37页 |
| 2.4.3.5 紫外扫描分析 | 第37页 |
| 2.4.3.6 特性黏度测定 | 第37页 |
| 2.4.4 多花黄精高活性组分多糖的结构解析 | 第37-38页 |
| 2.4.4.1 果糖含量测定 | 第37-38页 |
| 2.4.4.2 傅里叶红外光谱（FT-IR）分析 | 第38页 |
| 2.4.4.3 糖腈乙酸酯衍生物测单糖组成 | 第38页 |
| 2.4.4.4 核磁共振波谱分析 | 第38页 |
| 2.4.5 数据处理 | 第38-39页 |
| 三 结果与分析 | 第39-57页 |
| 3.1 多花黄精不同组分的制备 | 第39-42页 |
| 3.1.1 多花黄精不同提取组分的初步制备 | 第39页 |
| 3.1.2 多花黄精粗多糖PCP的初步分离 | 第39-40页 |
| 3.1.3 多花黄精水洗糖PCP1纯化 | 第40-42页 |
| 3.2 多花黄精不同组分的体外活性评价 | 第42-47页 |
| 3.2.1 NCI-H716细胞的生长曲线 | 第42-43页 |
| 3.2.2 多花黄精不同组分对NCI-H716细胞毒性的检测 | 第43-44页 |
| 3.2.3 多花黄精不同组分对NCI-H716细胞分泌GLP-1的影响 | 第44-46页 |
| 3.2.4 多花黄精高活性组分多糖PCP11细胞毒性及活性验证 | 第46-47页 |
| 3.3 多花黄精高活性组分多糖PCP11理化性质分析 | 第47-48页 |
| 3.4 多花黄精高活性组分多糖PCP11结构解析 | 第48-57页 |
| 3.4.1 果糖含量测定 | 第48-49页 |
| 3.4.2 傅里叶红外光谱（FT-IR）分析 | 第49-50页 |
| 3.4.3 糖腈乙酸酯衍生物测单糖组成分析 | 第50-52页 |
| 3.4.4 核磁共振波谱分析 | 第52-57页 |
| 四 讨论 | 第57-59页 |
| 五 结论 | 第59-60页 |
| 5.1 多花黄精的分离纯化 | 第59页 |
| 5.2 多花黄精各组分体外GLP-1分泌评价 | 第59页 |
| 5.3 多花黄精多糖PCP11的理化性质及结构解析 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第69-70页 |
