| 中文摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-24页 |
| ·泛素-26S蛋白酶体系统（UPS） | 第14-18页 |
| ·泛素 | 第15页 |
| ·泛素活化酶（E1） | 第15-16页 |
| ·泛素激活酶（E2） | 第16页 |
| ·泛素连接酶（E3） | 第16-18页 |
| ·HECT结构域家族 | 第17页 |
| ·RING/U-box结构域家族 | 第17页 |
| ·SCF复合体 | 第17-18页 |
| ·26S蛋白酶体 | 第18页 |
| ·泛素/26S蛋白酶体的功能 | 第18-21页 |
| ·泛素/26S蛋白酶体途径参与植物激素信号途径 | 第18-19页 |
| ·泛素/26S蛋白酶体途径参与花器官的发育 | 第19-20页 |
| ·泛素/26S蛋白酶体途径参与光形态建成 | 第20页 |
| ·泛素/26S蛋白酶体途径参与生物和非生物胁迫 | 第20-21页 |
| ·植物启动子的研究进展 | 第21-22页 |
| ·组成型启动子 | 第21页 |
| ·组织特异性启动子 | 第21-22页 |
| ·诱导型启动子 | 第22页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第22-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-38页 |
| ·实验材料 | 第24-25页 |
| ·植物材料 | 第24页 |
| ·烟草材料培养及处理 | 第24页 |
| ·菌株与质粒 | 第24页 |
| ·酶与各种生化试剂 | 第24页 |
| ·PCR引物 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-38页 |
| ·转基因烟草PCR鉴定 | 第25-26页 |
| ·CTAB法提取烟草基因组DNA | 第25-26页 |
| ·转基因烟草的PCR检测 | 第26页 |
| ·转基因烟草基因表达水平的检测 | 第26-29页 |
| ·TRIZOL法提取RNA | 第26-27页 |
| ·反转录cDNA第一条链的合成 | 第27-28页 |
| ·荧光定量PCR检测基因的表达水平 | 第28-29页 |
| ·转基因烟草F-box蛋白的Western杂交 | 第29-31页 |
| ·植物总蛋白的提取 | 第29页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第29-30页 |
| ·半干法蛋白转移 | 第30-31页 |
| ·封闭及杂交 | 第31页 |
| ·农杆菌介导法转化烟草 | 第31-32页 |
| ·农杆菌培养 | 第32页 |
| ·烟草转化、培养及植株再生 | 第32页 |
| ·GUS化学染色 | 第32-33页 |
| ·转基因烟草的生理指标测定 | 第33-36页 |
| ·烟草种子萌发率 | 第33页 |
| ·光合参数的测定 | 第33页 |
| ·叶片相对含水量的测定 | 第33-34页 |
| ·失水速率的测定 | 第34页 |
| ·电导法测量植物电解质外渗 | 第34页 |
| ·叶片渗透势的测定 | 第34页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第34-35页 |
| ·脯氨酸含量的测定 | 第35页 |
| ·可溶性糖的测定 | 第35页 |
| ·DAB和NBT染色 | 第35页 |
| ·过氧化氢含量的测定 | 第35-36页 |
| ·超氧阴离子自由基的测定 | 第36页 |
| ·丙二醛（MDA）的含量测定 | 第36页 |
| ·抗氧化酶活性的测定 | 第36页 |
| ·统计分析 | 第36-38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-52页 |
| ·诱导表达TaFBA1转基因烟草的筛选及鉴定 | 第38-39页 |
| ·不同类型转基因植株的表型差异 | 第39页 |
| ·诱导表达TaFBA1转基因植株的抗旱性分析 | 第39-42页 |
| ·诱导表达TaFBA1增强了烟草种子萌发对水分胁迫的抗性 | 第39-40页 |
| ·诱导表达TaFBA1可以提高烟草植株对干旱胁迫的抗性 | 第40-41页 |
| ·干旱胁迫诱导表达TaFBA1烟草光合参数的检测 | 第41-42页 |
| ·诱导表达TaFBA1对转基因烟草渗透调节能力的影响 | 第42-44页 |
| ·诱导表达TaFBA1转基因植株具有较高的水分保持能力 | 第42-43页 |
| ·诱导表达TaFBA1提高转基因烟草可溶性糖和脯氨酸的积累 | 第43-44页 |
| ·诱导表达TaFBA1对转基因烟草抗氧化能力的影响 | 第44-49页 |
| ·干旱胁迫对RD29A::TaFBA1转基因烟草过氧化氢和超氧阴离子自由基含量的影响 | 第44-46页 |
| ·干旱胁迫对RD29A::TaFBA1转基因烟草MDA和电解质外渗的影响 | 第46-47页 |
| ·甲基紫精（MV）处理对RD29A::TaFBA1转基因烟草的影响 | 第47页 |
| ·干旱胁迫对RD29A::TaFBA1转基因烟草抗氧化酶活性的影响 | 第47-48页 |
| ·干旱胁迫对RD29A::TaFBA1转基因烟草抗氧化酶相关基因表达的影响 | 第48-49页 |
| ·TaFBA1启动子的表达分析 | 第49-52页 |
| ·proTaFBA1::GUS表达载体的构建及转化 | 第49-51页 |
| ·TaFBA1启动子的分析 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-56页 |
| ·干旱诱导表达TaFBA1可以消除正常情况下TaFBA1过表达所引起的表型差异 | 第52-53页 |
| ·干旱诱导表达TaFBA1可以提高转基因植株的干旱抗性 | 第53页 |
| ·转基因植株可以通过降低渗透势以维持较高的水分保持能力 | 第53-54页 |
| ·干旱胁迫下转基因烟草中活性氧（ROS）的积累量低于野生型 | 第54-56页 |
| 5 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第67页 |
