| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 1 绪论 | 第10-21页 |
| ·植物种质资源超低温保存技术的研究概况 | 第10-11页 |
| ·脱水法 | 第10页 |
| ·微滴法 | 第10页 |
| ·包埋法和包埋脱水法 | 第10-11页 |
| ·玻璃化法、微滴玻璃化法和包埋玻璃化法 | 第11页 |
| ·玻璃化法超低温保存技术的研究进展 | 第11-15页 |
| ·影响玻璃化法超低温保存技术的关键步骤 | 第11-12页 |
| ·超低温保存后材料活性的检测 | 第12-15页 |
| ·植物种质资源超低温保存的遗传稳定性 | 第15-16页 |
| ·形态标记 | 第15页 |
| ·细胞标记 | 第15页 |
| ·生化标记 | 第15页 |
| ·分子标记 | 第15-16页 |
| ·超低温保存中生理生化的基础 | 第16-18页 |
| ·含水量 | 第16页 |
| ·可溶性糖和可溶性蛋白 | 第16-17页 |
| ·淀粉 | 第17页 |
| ·丙二醛与相对电导率 | 第17-18页 |
| ·百子莲属植物种质资源概况 | 第18-20页 |
| ·种类与地理分布 | 第18页 |
| ·离体繁殖与种质资源保存 | 第18-20页 |
| ·本试验研究的目的、意义及技术路线 | 第20-21页 |
| ·本试验研究的目的及意义 | 第20页 |
| ·技术路线 | 第20-21页 |
| 2 百子莲玻璃化法超低温保存体系的建立 | 第21-29页 |
| ·材料与方法 | 第21-23页 |
| ·材料 | 第21页 |
| ·方法 | 第21-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-27页 |
| ·蔗糖浓度对细胞存活率的影响 | 第23-24页 |
| ·预培养时间对细胞存活率的影响 | 第24-25页 |
| ·装载时间对细胞存活率的影响 | 第25页 |
| ·脱水时间对细胞存活率的影响 | 第25-26页 |
| ·正交试验设计 | 第26-27页 |
| ·本章小结 | 第27-29页 |
| 3 百子莲胚性愈伤组织超低温保存后的遗传稳定性评价 | 第29-36页 |
| ·材料与方法 | 第29-33页 |
| ·材料 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-35页 |
| ·DNA提取的质量检测 | 第33页 |
| ·DNA酶切与连接 | 第33页 |
| ·预扩增 | 第33页 |
| ·选择性扩增 | 第33-34页 |
| ·AFLP分子标记检测基因组稳定性 | 第34-35页 |
| ·本章小结 | 第35-36页 |
| 4 超低温保存中生理生化变化 | 第36-44页 |
| ·试验材料与方法 | 第36-38页 |
| ·含水量的测定 | 第36页 |
| ·丙二醛质量摩尔浓度和相对电导率的测定 | 第36-37页 |
| ·可溶性糖和可溶性蛋白质量分数的测定 | 第37-38页 |
| ·淀粉质量分数的测定 | 第38页 |
| ·数据分析 | 第38页 |
| ·试验结果与分析 | 第38-43页 |
| ·细胞内含水量的变化 | 第38-39页 |
| ·丙二醛质量摩尔浓度的变化 | 第39页 |
| ·相对电导率的变化 | 第39-40页 |
| ·可溶性糖质量分数的变化 | 第40-41页 |
| ·可溶性蛋白质量分数的变化 | 第41页 |
| ·淀粉质量分数的变化 | 第41-42页 |
| ·各生理指标之间与玻璃化法超低温保存细胞存活率之间多元相关分析 | 第42-43页 |
| ·本章小结 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 附录 | 第52-54页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |