| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| ·低温对植物影响 | 第12-13页 |
| ·低温对植物的伤害 | 第12页 |
| ·低温使植物受害的原因 | 第12-13页 |
| ·抗氧化系统在低温胁迫中的作用 | 第13-14页 |
| ·低温胁迫下植物体内ASA-GSH循环的作用 | 第13-14页 |
| ·氧化胁迫下AsA-GSH循环的作用 | 第14页 |
| ·ABA对AsA-GSH循环的调控 | 第14-15页 |
| ·ABA与抗氧化酶之间的信号调控 | 第14-15页 |
| ·ABA与AsA-GSH循环的信号调控 | 第15页 |
| ·实时定量PCR在基因表达检测中的应用 | 第15-18页 |
| ·实时定量PCR的检测原理 | 第16-17页 |
| ·实时定量PCR的定量方法 | 第17-18页 |
| ·实时定量PCR技术的应用 | 第18页 |
| ·医学领域的研究 | 第18页 |
| ·东农冬麦1号的特性和研究进展 | 第18-19页 |
| ·研究目的及意义 | 第19-21页 |
| 2 试验材料与方法 | 第21-30页 |
| ·试验材料 | 第21-22页 |
| ·试验区自然情况 | 第21页 |
| ·试验品种 | 第21页 |
| ·激素处理 | 第21-22页 |
| ·实验试剂 | 第22页 |
| ·试验方法 | 第22-28页 |
| ·电导法测定植物的低温伤害程度 | 第22页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)含量测定 | 第22页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)酶活测定 | 第22-23页 |
| ·AsA、GSH含量测定 | 第23-24页 |
| ·AsA/DHA和GsH/GSSG测定 | 第24页 |
| ·ASA-GSH循环关键酶酶活测定 | 第24-26页 |
| ·关键酶基因引物设计 | 第26页 |
| ·样品总RNA提取 | 第26页 |
| ·使用Dnase Ⅰ处理纯化样品 | 第26-27页 |
| ·Real-Time PCR检测 | 第27-28页 |
| ·试验数据统计分析 | 第28-29页 |
| ·技术路线 | 第29-30页 |
| 3 试验结果与分析 | 第30-60页 |
| ·外源ABA影响冬小麦相对电导率和过氧化氢(H_2O_2)含量的变化 | 第30-34页 |
| ·相对电导率的变化 | 第30-32页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)含量的变化 | 第32-34页 |
| ·外源ABA影响冬小麦非酶抗氧化物质的变化 | 第34-46页 |
| ·AsA含量的变化 | 第34-36页 |
| ·总AsA含量的变化 | 第36-38页 |
| ·GSH含量的变化 | 第38-40页 |
| ·总GSH含量的变化 | 第40-42页 |
| ·AsA/DHA和GSH/GSSG的变化 | 第42-46页 |
| ·外源ABA影响冬小麦抗氧化酶的变化 | 第46-51页 |
| ·超氧化物歧化酶(SOD)的变化 | 第46-48页 |
| ·过氧化氢酶(CAT)变化 | 第48-49页 |
| ·过氧化物酶(POD)变化 | 第49-51页 |
| ·外源ABA影响ASA-GSH循环代谢关键酶活及表达模式 | 第51-60页 |
| ·ASA-GSH循环编码关键酶基因的引物设计 | 第51-52页 |
| ·各处理样品总RNA的提取及反转录 | 第52页 |
| ·DNase Ⅰ处理效果检测及引物特异性检测 | 第52-53页 |
| ·冬小麦叶片和分蘖节的AEL水平 | 第53-54页 |
| ·ASA-GSH循环代谢中关键酶活及编码关键酶基因的表达模式分析 | 第54-58页 |
| ·关键酶基因表达量的相关性分析 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-63页 |
| ·低温胁迫下外源ABA对冬小麦活性氧水平的影响 | 第60页 |
| ·低温胁迫下外源ABA对冬小麦抗氧化酶类的影响 | 第60页 |
| ·低温胁迫下外源ABA对冬小麦非酶抗氧化物质的影响 | 第60-61页 |
| ·低温胁迫下外源ABA对ASA-GSH循环代谢关键酶表达模式的影响 | 第61-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第71页 |
