| 第一章 文献综述 | 第1-20页 |
| 1．1 多肽合成研究的意义 | 第10页 |
| 1．2 多肽的基础知识 | 第10-12页 |
| 1．2．1 多肽的概念 | 第10页 |
| 1．2．2 多肽的物理和化学性质 | 第10-11页 |
| 1．2．3 多肽的分类 | 第11-12页 |
| 1．3 多肽合成的发展史 | 第12页 |
| 1．4 固相合成多肽的原理及发展应用 | 第12-13页 |
| 1．5 Fmoc固相合成中的耦联方法 | 第13-15页 |
| 1．6 色谱在多肽与蛋白质分离纯化方面的应用 | 第15-16页 |
| 1．7 促进二硫键形成的方法 | 第16-18页 |
| 1．8 多肽的应用与研究方向 | 第18-20页 |
| 第二章 多肽的合成 | 第20-37页 |
| 2．1 前言 | 第20-22页 |
| 2．2 实验部分 | 第22-29页 |
| 2．2．1 仪器和设备 | 第22页 |
| 2．2．2 试剂 | 第22-23页 |
| 2．2．3 实验装置图 | 第23-25页 |
| 2．2．3．1 多肽合成实验装置图 | 第23-24页 |
| 2．2．3．2 多肽切割实验装置图 | 第24-25页 |
| 2．2．4 奥曲肽的合成 | 第25-26页 |
| 2．2．4．1 树脂的溶胀 | 第25页 |
| 2．2．4．2 树脂的洗涤 | 第25页 |
| 2．2．4．3 Fmoc基团的脱除 | 第25页 |
| 2．2．4．4 茚三酮检测 | 第25-26页 |
| 2．2．4．5 氨基酸的缩合反应 | 第26页 |
| 2．2．4．6 肽-树脂的切割 | 第26页 |
| 2．2．5 Phe-Leu-Glu-Glu-Leu的合成 | 第26-27页 |
| 2．2．5．1 树脂的溶胀 | 第26-27页 |
| 2．2．5．2 树脂上第一个氨基酸的接肽反应 | 第27页 |
| 2．2．5．3 Fmoc基团的脱除、氨基酸的缩合反应、肽-树脂的切割 | 第27页 |
| 2．2．6 C_(15)H_(31)-CO-Lys-Thr-Thr-Lys-Ser的合成 | 第27-28页 |
| 2．2．6．1 树脂的溶胀 | 第27页 |
| 2．2．6．2 树脂上第一个氨基酸的接肽反应 | 第27页 |
| 2．2．6．3 Fmoc基团的脱除、氨基酸的缩合反应 | 第27页 |
| 2．2．6．4 Fmoc-Lys-Thr-Thr-Lys-Ser中α-NH_2基的酰化反应 | 第27-28页 |
| 2．2．6．5 树脂的切割 | 第28页 |
| 2．2．7 放大规模的奥曲肽合成 | 第28-29页 |
| 2．2．7．1 树脂的溶胀 | 第28页 |
| 2．2．7．2 树脂的洗涤 | 第28页 |
| 2．2．7．3 Fmoc基团的脱除 | 第28页 |
| 2．2．7．4 氨基酸的缩合反应 | 第28页 |
| 2．2．7．5 肽-树脂的切割 | 第28-29页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2．3．1 多肽合成中树脂的选择 | 第29页 |
| 2．3．2 多肽合成中保护基的选择 | 第29-30页 |
| 2．3．3 缩合反应试剂的选择 | 第30-31页 |
| 2．3．4 多肽合成中裂解液的选择 | 第31-33页 |
| 2．3．5 放大规模合成时缩合剂浓度的选择 | 第33-34页 |
| 2．3．6 多肽粗产品的产率 | 第34页 |
| 2．3．7 多肽合成结果的定性表征 | 第34-36页 |
| 2．4 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 多肽的分离与纯化 | 第37-48页 |
| 3．1 前言 | 第37页 |
| 3．2 实验部分 | 第37-40页 |
| 3．2．1 仪器和设备 | 第37-38页 |
| 3．2．2 试剂及药品 | 第38页 |
| 3．2．3 流动相组成 | 第38页 |
| 3．2．4 高压液相色谱柱的装填 | 第38-39页 |
| 3．2．5 还原变性奥曲肽的制备 | 第39页 |
| 3．2．6 还原变性奥曲肽的分离纯化步骤 | 第39页 |
| 3．2．7 巯基含量的测定 | 第39-40页 |
| 3．2．8 奥曲肽标准曲线的绘制及应用 | 第40页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第40-47页 |
| 3．3．1 奥曲肽分离纯化后产品的检测 | 第40-42页 |
| 3．3．1．1 奥曲肽纯度的检测 | 第40-41页 |
| 3．3．1．2 标准曲线法确定奥曲肽的含量 | 第41-42页 |
| 3．3．1．3 MALDI-TOF mass检测 | 第42页 |
| 3．3．2 C_(15)H_(31)-CO-Lys-Thr-Thr-Lys-Ser分离条件的选择及其纯化后结果 | 第42-44页 |
| 3．3．3 Phe-Leu-Glu-Glu-Leu分离条件的选择及其纯化后结果 | 第44-47页 |
| 3．4 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 氧化还原型奥曲肽的几种方法的比较 | 第48-58页 |
| 4．1 前言 | 第48页 |
| 4．2 实验部分 | 第48-50页 |
| 4．2．1 仪器和设备 | 第48-49页 |
| 4．2．2 试剂及药品 | 第49页 |
| 4．2．3 巯基含量的测定 | 第49页 |
| 4．2．4 空气氧化法 | 第49页 |
| 4．2．5 H_2O_2氧化法 | 第49-50页 |
| 4．2．6 DMSO氧化法 | 第50页 |
| 4．2．7 CuSO_4氧化法 | 第50页 |
| 4．2．8 K_3Fe(CN)_6氧化法 | 第50页 |
| 4．2．9 色谱条件 | 第50页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第50-56页 |
| 4．3．1 还原型奥曲肽在0．05mg/mL浓度下各种氧化方法结果的比较 | 第50-51页 |
| 4．3．2 空气氧化法中多肽浓度对氧化效率的影响 | 第51-52页 |
| 4．3．3 H_ZO_2氧化法中双氧水的浓度对氧化结果的影响 | 第52-53页 |
| 4．3．4 K_3Fe(CN)_6氧化法的动力学 | 第53-54页 |
| 4．3．5 Cu~(2+)氧化法的动力学 | 第54页 |
| 4．3．6 DMSO氧化法的动力学 | 第54-55页 |
| 4．3．7 各种氧化结果的色谱检测 | 第55-56页 |
| 4．4 小结 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
