| 缩写及符号 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-6页 |
| 英文摘要 | 第6-8页 |
| 一、引言 | 第8-16页 |
| ·外网状层的神经回路 | 第9-10页 |
| ·视网膜外网状层的突触可塑性 | 第10-11页 |
| ·AMPA 受体 | 第11-13页 |
| ·水平细胞上的谷氨酸受体 | 第13页 |
| ·水平细胞中的钙离子信号 | 第13-16页 |
| 二、材料与方法 | 第16-33页 |
| ·试剂与溶液 | 第16页 |
| ·标本制备 | 第16-17页 |
| ·离体的全视网膜标本 | 第17页 |
| ·急性分离的视网膜细胞 | 第17页 |
| ·细胞类型鉴定 | 第17-18页 |
| ·细胞内记录 | 第18-22页 |
| ·灌流系统 | 第19-20页 |
| ·光刺激系统 | 第20-21页 |
| ·给光刺激模式 | 第21页 |
| ·EGTA 的电注射 | 第21-22页 |
| ·记录系统 | 第22页 |
| ·钙离子成像 | 第22-26页 |
| ·灌流系统 | 第23-24页 |
| ·钙敏荧光染料FURA-2 | 第24-25页 |
| ·基本实验程序 | 第25-26页 |
| ·钙信号的表示 | 第26页 |
| ·膜片箝记录 | 第26-29页 |
| ·灌流系统 | 第27-28页 |
| ·电极制备 | 第28-29页 |
| ·基本实验程序 | 第29页 |
| ·数据分析 | 第29页 |
| ·模型分析 | 第29-33页 |
| 三、结果 | 第33-57页 |
| ·视锥与水平细胞之间的突触可塑性 | 第33-34页 |
| ·细胞机制 | 第34-43页 |
| ·胞内钙离子信号的作用 | 第34-35页 |
| ·钙离子通透的AMPA 受体的作用 | 第35-38页 |
| ·胞内钙库的作用 | 第38-41页 |
| ·电压门控钙离子通道的作用 | 第41-43页 |
| ·胞内钙离子的动力学 | 第43-47页 |
| ·AMPA 引起的胞内钙变化 | 第44-45页 |
| ·AMAP 引起的胞内钙变化的模拟 | 第45-47页 |
| ·钙库的作用 | 第47页 |
| ·两类AMPA 受体共存 | 第47-52页 |
| ·CP-AMPA 的表达 | 第48-49页 |
| ·CP-AMPA 受体和CIP-AMPA 受体共表达 | 第49-52页 |
| ·红敏突触和绿敏突触的不同 | 第52-57页 |
| 四、讨论 | 第57-64页 |
| ·LHC 的突触可塑性 | 第57-59页 |
| ·钙库的作用 | 第59-60页 |
| ·两类AMPA 受体共存的意义 | 第60-61页 |
| ·红绿突触的不同 | 第61-64页 |
| 五、参考文献 | 第64-75页 |
| 六、综述 | 第75-87页 |
| 学习期间发表的文章 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 中科院上海生命科学研究院 研究生学位论文声明 | 第89页 |
| 研究生学位论文版权使用授权声明 | 第89页 |