目录 | 第1-5页 |
第一部分 反义核酸的体外抗辐射效应研究 | 第5-45页 |
中文摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略词表 | 第7-10页 |
实验材料 | 第10-11页 |
1 细胞株及动物 | 第10页 |
2 主要试剂 | 第10-11页 |
3 主要仪器 | 第11页 |
实验方法 | 第11-22页 |
1 靶向bax和caspase-3-mRNA的反义药物设计 | 第11-18页 |
·反义核酸药物的设计原则 | 第11页 |
·靶向bax和caspase-3-mRNA的反义药物设计步骤 | 第11-13页 |
·人与鼠靶bax-mRNA的种属间同源性分析 | 第13页 |
·靶向bax和caspase-3-mRNA的反义药物设计 | 第13-14页 |
·人的caspase家族各成员mRNA序列同源分析 | 第14页 |
·反义药物的合成 | 第14页 |
·靶向bax-mRNA反义药物的blastn分析 | 第14-18页 |
2 细胞培养及反义药物处理 | 第18页 |
3 MTT检测反义核酸促进辐射后HELF细胞存活的作用 | 第18页 |
4 SRB法检测反义核酸促进辐射后HELF细胞存活的作用 | 第18-19页 |
5 小鼠骨髓CFU-GM集落的培养及bax-ODNs抗辐射研究 | 第19页 |
6 TXC002处理射线诱导的HELF细胞后bax-mRNA表达RT-PCR检测 | 第19-21页 |
7 流式细胞仪检测bax-ODNs对射线诱导的HELF细胞凋亡发生率的影响 | 第21页 |
8 流式细胞仪检测射线诱导后不同时间的HELF细胞凋亡的发生率 | 第21-22页 |
实验结果 | 第22-28页 |
1 反义核酸的设计结果 | 第22-23页 |
2 对γ-射线辐射后的HELF细胞存活的影响 | 第23-25页 |
3 TXC002对γ-射线辐射后CFU-GM集落形成的影响 | 第25-26页 |
4 RT-PCR方法检测对γ-射线辐射后bax-mRNA表达的影响 | 第26-27页 |
5 TXC002对γ-射线辐射后对HELF细胞周期的影响 | 第27-28页 |
讨论 | 第28-30页 |
结论 | 第30-31页 |
参考文献 | 第31-32页 |
附录1: bax反义硫代脱氧寡核苷酸的体外抗辐射效应研究 | 第32-40页 |
附录2: 抑制bax基因表达与细胞保护的研究进展 | 第40-45页 |
第二部分 双氢青蒿素抗癌药物的抗癌效应研究 | 第45-85页 |
摘要 | 第45-49页 |
中文摘要 | 第45-47页 |
Abstract | 第47-49页 |
引言 | 第49-51页 |
实验材料 | 第51-52页 |
1 细胞株 | 第51页 |
2 药品和试剂 | 第51页 |
3 主要仪器 | 第51页 |
4 动物及动物瘤株 | 第51-52页 |
实验方法 | 第52-58页 |
一. 双氢青蒿素抗癌作用的药效评价方法 | 第52-54页 |
1 体内实验 | 第52页 |
2 体外实验 | 第52-54页 |
·MTT法检测双氢青蒿素对肿瘤细胞的抑制作用 | 第52-53页 |
·SRB法检测双氢青蒿素对肿瘤细胞的抑制作用 | 第53页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞生长曲线的抑制作用 | 第53页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞克隆原细胞集落形成能力的影响 | 第53-54页 |
二. 双氢青蒿素抗癌作用的药理机制研究方法 | 第54-58页 |
1 体内实验 | 第54页 |
小鼠肿瘤动物模型的瘤体铁含量测定 | 第54页 |
2 体外实验 | 第54-58页 |
·双氢青蒿素诱导肿瘤细胞产生自由基的测定 | 第54页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后细胞形态学的观察 | 第54-55页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后肿瘤细胞单细胞微凝胶电泳法(单细胞彗星电泳)检测 | 第55-56页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后肿瘤细胞线粒体膜电位测定 | 第56页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞生长周期的影响 | 第56页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后凋亡基因的表达 | 第56-58页 |
实验结果 | 第58-79页 |
一. 双氢青蒿素抗癌作用的药效评价结果 | 第58-67页 |
1 体内实验 | 第58-63页 |
·DHQS对C57小鼠B16-BL6黑色素瘤移植瘤的抑制作用 | 第58-59页 |
·DHQS对昆明小鼠H22肝癌移植瘤的抑制作用 | 第59-60页 |
·DHQS对昆明小鼠lewis肺癌移植瘤的抑制作用 | 第60-61页 |
·DHGS对昆明小鼠S180肉瘤移植瘤的抑制作用 | 第61-62页 |
·整体试验结果小结 | 第62-63页 |
2 体外实验 | 第63-67页 |
·MTT法检测双氢青蒿素对肿瘤细胞的抑制作用 | 第63页 |
·SRB法检测双氢青蒿素处理肿瘤细胞和正常细胞后的细胞生长率 | 第63-64页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞生长曲线的抑制作用 | 第64-65页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞克隆原细胞集落形成能力的影响 | 第65-67页 |
二. 双氢青蒿素抗癌作用的药理机制研究结果 | 第67-79页 |
1 体内实验 | 第67-68页 |
小鼠肿瘤动物模型的瘤体铁含量测定 | 第67-68页 |
2 本外实验 | 第68-79页 |
·双氢青蒿素诱导肿瘤细胞产生自由基的测定 | 第68-69页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后的形态学变化 | 第69-73页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后肿瘤细胞单细胞彗星电泳 | 第73页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后肿瘤细胞线粒体膜电位测定 | 第73-75页 |
·双氢青蒿素对肿瘤细胞生长周期的影响 | 第75-78页 |
·双氢青蒿素作用肿瘤细胞后凋亡基因的表达 | 第78-79页 |
讨论 | 第79-83页 |
结论 | 第83-39页 |
参考文献 | 第39-85页 |
致谢 | 第85-86页 |
个人简历 | 第86页 |