摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
第一章 引言 | 第12-24页 |
1 研究意义 | 第12-13页 |
2 红枣中基本营养成分研究 | 第13-15页 |
·环核苷酸 | 第13页 |
·五环三萜类化合物 | 第13页 |
·黄酮类物质 | 第13-14页 |
·膳食纤维 | 第14页 |
·矿质元素 | 第14-15页 |
3 糖类成分的研究 | 第15-20页 |
·提取分离方法 | 第15-16页 |
·纯化方法 | 第16-17页 |
·纯度鉴定 | 第17页 |
·结构鉴定 | 第17-20页 |
4 糖类物质的生物学活性 | 第20-22页 |
·多糖生物学活性 | 第20-21页 |
·低聚糖生物学活性 | 第21-22页 |
5 研究内容 | 第22-24页 |
·枣中营养成分测定 | 第22页 |
·枣中糖类成分的分级制备 | 第22页 |
·单糖组成测定 | 第22页 |
·低聚糖组成分析 | 第22页 |
·低聚糖的促进双歧杆菌增长作用 | 第22-24页 |
第二章 红枣中基本营养成分分析 | 第24-29页 |
1 实验材料 | 第24页 |
·原料 | 第24页 |
·仪器 | 第24页 |
2 试验方法 | 第24-25页 |
·水分测定 | 第24-25页 |
·VC 测定 | 第25页 |
·还原糖、总糖测定 | 第25页 |
·蛋白质测定 | 第25页 |
·脂肪测定 | 第25页 |
·总酸度测定 | 第25页 |
·纤维素测定 | 第25页 |
·总灰分测定 | 第25页 |
·矿物质元素测定 | 第25页 |
3 结果与分析 | 第25-28页 |
·枣中糖类、蛋白质、脂肪含量分析 | 第25-26页 |
·枣中含水量、Vc、灰分、总酸测定 | 第26-27页 |
·矿质元素含量分析 | 第27-28页 |
4 讨论 | 第28-29页 |
第三章 金丝小枣水溶性多糖的单糖组成研究 | 第29-36页 |
1 材料 | 第29-30页 |
·材料与试剂 | 第29-30页 |
·实验仪器 | 第30页 |
2 试验方法 | 第30-31页 |
·多糖制备 | 第30页 |
·多糖水解 | 第30页 |
·标准溶液配制 | 第30页 |
·单糖衍生过程 | 第30-31页 |
·色谱条件 | 第31页 |
3 结果与分析 | 第31-35页 |
·乙腈体积对PMP-单糖衍生物分离的影响 | 第31页 |
·PMP 衍生条件优化 | 第31-32页 |
·精密度测定 | 第32-33页 |
·样品分析 | 第33-35页 |
4 讨论 | 第35-36页 |
第四章 低聚糖的分离与结构测定 | 第36-41页 |
1 材料与仪器 | 第36页 |
·实验材料 | 第36页 |
·实验仪器 | 第36页 |
2 实验方法 | 第36-37页 |
·粗低聚糖制备 | 第36-37页 |
·低聚糖的纯化 | 第37页 |
·低聚糖测定色谱条件 | 第37页 |
·单糖测定色谱条件 | 第37页 |
3 结果与分析 | 第37-40页 |
·低聚糖纯化最佳条件 | 第37-38页 |
·离子色谱分析低聚糖 | 第38-39页 |
·离子色谱测定单糖 | 第39-40页 |
4 讨论 | 第40-41页 |
·粗低聚糖的纯化 | 第40页 |
·离子色谱法对纯化组分测定 | 第40-41页 |
第五章 金丝小枣低聚糖对双歧杆菌体外生长的促进作用 | 第41-46页 |
1 材料 | 第41-42页 |
·实验材料 | 第41页 |
·实验设备 | 第41-42页 |
·培养基 | 第42页 |
2 试验方法 | 第42页 |
·菌种活化 | 第42页 |
·双歧杆菌活菌计数方法 | 第42页 |
·双歧杆菌生长曲线测定 | 第42页 |
·金丝小枣低聚糖对双歧杆菌体外生长的影响 | 第42页 |
·体外验证试验 | 第42页 |
3 实验结果 | 第42-45页 |
·动物双歧杆菌生长曲线 | 第42-43页 |
·低聚糖对双歧杆菌的体外促生长作用 | 第43-44页 |
·体外验证试验 | 第44-45页 |
4 讨论 | 第45-46页 |
第六章 结果与讨论 | 第46-48页 |
1 实验结果 | 第46页 |
2 讨论 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-55页 |
硕士期间发表论文 | 第55-56页 |
附件 | 第56-58页 |
作者简介 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |