致谢 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
插图和表格清单 | 第13-14页 |
缩略词 | 第14-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-39页 |
·Cd的特性及对植物的生理毒害作用 | 第16-19页 |
·Cd的特性 | 第16-17页 |
·Cd对植物的生理毒害作用 | 第17-19页 |
·Cd对植物生长的影响 | 第17页 |
·Cd对植物水分吸收和气孔运动的影响 | 第17-18页 |
·Cd对植物光合作用的影响 | 第18页 |
·Cd能引起植物的氧化胁迫 | 第18-19页 |
·Cd影响植物的酶活性 | 第19页 |
·Cd进入植物体内的方式及在植物体内的运输 | 第19-25页 |
·土壤中Cd的生物有效性 | 第20-21页 |
·Cd进入植物体的具体转运方式 | 第21-24页 |
·Cd在植物体内的运输 | 第24-25页 |
·植物对Cd胁迫的应答 | 第25-33页 |
·PC的螯合作用 | 第26页 |
·Cd在液泡中区室化 | 第26-28页 |
·细胞壁束缚作用 | 第28-29页 |
·质膜外排 | 第29-30页 |
·胁迫蛋白 | 第30页 |
·胁迫乙烯 | 第30-32页 |
·金属硫蛋白 | 第32页 |
·抗氧化保护机制和抗氧化酶 | 第32-33页 |
·研究目标、意义和创新点 | 第33-39页 |
·研究目标 | 第33-36页 |
·研究意义 | 第36-37页 |
·本研究中要解决的问题 | 第37页 |
·研究内容 | 第37页 |
·本研究拟解决的关键性问题 | 第37-38页 |
·创新点和特色 | 第38-39页 |
第二章 水稻OsPCS基因小家族的预测及分子进化 | 第39-55页 |
·前言 | 第40-41页 |
·材料与方法 | 第41-43页 |
·实验材料 | 第41-42页 |
·cDNA合成及RT-PCR | 第42页 |
·数据库搜索、编辑及序列比对 | 第42-43页 |
·数据分析和系统树构建 | 第43页 |
·保守功能结构域分析 | 第43页 |
·结果与分析 | 第43-48页 |
·水稻PCS和类PCS基因鉴定及其结构 | 第43-44页 |
·水稻PCS基因的染色体定位 | 第44页 |
·水稻PCS基因和类PCS基因的表达模式 | 第44-48页 |
·讨论 | 第48-54页 |
·水稻PCS基因可以分成两个亚族 | 第48-50页 |
·含PHYTOCHELATIN功能结构域基因由单基因向多基因进化 | 第50-54页 |
·激活细菌PCS的结合位点可能不是半胱氨酸 | 第54页 |
·结论与展望 | 第54-55页 |
第三章 水稻Cd耐受突变体筛选及持续Cd胁迫下Cd亚细胞分布特性 | 第55-68页 |
·前言 | 第56-57页 |
·材料和方法 | 第57-60页 |
·Cd耐受突变体的筛选及遗传分析 | 第57-58页 |
·Ds/T-DNA插入片段的鉴定 | 第58页 |
·用于生理生化分析实验材料的水培 | 第58页 |
·Cd的吸收和亚细胞分布分析 | 第58-59页 |
·细胞壁多糖含量的测定 | 第59页 |
·PC含量的测定 | 第59-60页 |
·统计分析 | 第60页 |
·结果与分析 | 第60-65页 |
·讨论 | 第65-67页 |
·结论与展望 | 第67-68页 |
第四章 持续Cd胁迫对水稻Cd耐受突变体cadH-5 ASC-GSH代谢的影响 | 第68-83页 |
·前言 | 第69-70页 |
·材料和方法 | 第70-72页 |
·材料 | 第70页 |
·H_2O_2和游离脯氨酸含量分析 | 第70页 |
·ASC/DHA,GSH/GSSG及NADPH/NADP~+比率分析 | 第70-72页 |
·酶活分析 | 第72页 |
·统计分析 | 第72页 |
·结果与分析 | 第72-78页 |
·水稻cadH-5和WT H_2O_2含量 | 第72-73页 |
·水稻cadH-5和WT游离Pro含量 | 第73-74页 |
·水稻cadH-5和WT ASC/DHA,GSH/GSSG及NADPH/NADP~+比例关系 | 第74-75页 |
·APX、GR、DHAR和MDHAR活性 | 第75-78页 |
·讨论 | 第78-81页 |
·结论与展望 | 第81-83页 |
第五章 结论与展望 | 第83-85页 |
参考文献 | 第85-99页 |
简历 | 第99-100页 |