| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 文献综述 | 第10-22页 |
| 1.1 引言 | 第10页 |
| 1.2 SSR引物开发 | 第10-13页 |
| 1.2.1 文库筛选法 | 第10-11页 |
| 1.2.2 富集法 | 第11-12页 |
| 1.2.3 STMP和SAM | 第12页 |
| 1.2.4 EST-SSR | 第12-13页 |
| 1.3 苦瓜SSR引物开发 | 第13页 |
| 1.4 遗传图谱的构建 | 第13-18页 |
| 1.4.1 作图群体的构建 | 第14-15页 |
| 1.4.2 葫芦科作物遗传图谱的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.5 瓜类白粉病抗性的遗传研究 | 第18-20页 |
| 1.5.1 白粉病病原菌及症状 | 第19页 |
| 1.5.2 白粉病的发病规律 | 第19页 |
| 1.5.3 苦瓜白粉病抗性的遗传规律研究 | 第19-20页 |
| 1.5.4 瓜类抗白粉病分子标记辅助育种的研究进展 | 第20页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 2 苦瓜SSR引物开发及其引物在瓜类作物中的穿梭性研究 | 第22-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-26页 |
| 2.1.1 材料 | 第22-24页 |
| 2.1.2 苦瓜DNA的提取及DNA质量检测 | 第24页 |
| 2.1.3 RAD-seq技术开发苦瓜SSR引物 | 第24-25页 |
| 2.1.4 苦瓜SSR-PCR反应体系的优化实验设计 | 第25-26页 |
| 2.1.5 SSR-PCR扩增及检测 | 第26页 |
| 2.1.6 筛选最佳的退火温度 | 第26页 |
| 2.1.7 多态性引物的筛选 | 第26页 |
| 2.1.8 苦瓜SSR多态性引物对六种瓜类作物的通用性及多态性 | 第26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.2.1 DNA检测 | 第26-27页 |
| 2.2.2 苦瓜SSR引物开发 | 第27页 |
| 2.2.3 SSR-PCR基本反应体系的建立 | 第27-28页 |
| 2.2.4 筛选最佳退火温度 | 第28页 |
| 2.2.5 多态性引物的筛选及其多态性分析 | 第28-29页 |
| 2.2.6 苦瓜SSR多态性引物对六种瓜类作物扩增的通用性及多态性分析 | 第29-31页 |
| 2.3 讨论 | 第31-34页 |
| 3 苦瓜SSR遗传图谱的构建 | 第34-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-35页 |
| 3.1.1 材料 | 第34页 |
| 3.1.2 基因组DNA的提取 | 第34-35页 |
| 3.1.3 SSR分子标记实验步骤 | 第35页 |
| 3.1.4 数据统计 | 第35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-39页 |
| 3.2.1 多态性引物的筛选 | 第35-36页 |
| 3.2.2 分子标记的偏分离 | 第36页 |
| 3.2.3 苦瓜SSR遗传图谱的构建 | 第36-39页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第39-41页 |
| 4 苦瓜F_(2:3)代白粉病QTL定位 | 第41-45页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-42页 |
| 4.1.1 材料 | 第41页 |
| 4.1.2 方法 | 第41-42页 |
| 4.2 结果与分析 | 第42-43页 |
| 4.2.1 不同测量时间F_(2:3)家系的白粉病抗性差异显著性分析 | 第42页 |
| 4.2.2 苦瓜白粉病抗性QTL定位 | 第42-43页 |
| 4.3 结论与讨论 | 第43-45页 |
| 5 全文结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 缩写词组 | 第53-54页 |
| 附录 | 第54-56页 |
| 附录1 非变性聚丙烯酰胺凝胶的制备及电泳 | 第54-55页 |
| 附录2 论文发表 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
