致谢 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩写和符号清单 | 第12-13页 |
文献综述 | 第13-19页 |
1 引言 | 第19-21页 |
2 材料与方法 | 第21-25页 |
2.1 材料 | 第21页 |
2.1.1 试剂与药品 | 第21页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第21页 |
2.2 动物 | 第21-22页 |
2.2.1 动物与细胞 | 第21-22页 |
2.2.2 实验设计 | 第22页 |
2.3 样品制备 | 第22页 |
2.4 生物指标测定 | 第22-24页 |
2.4.1 蛋白含量测定 | 第22-23页 |
2.4.2 谷胱甘肽还原酶(GR)活力检测 | 第23页 |
2.4.3 谷氧还蛋白(Grx)活力检测 | 第23页 |
2.4.4 硫氧还蛋白还原酶(TrxR)活力检测 | 第23页 |
2.4.5 硫氧还蛋白(Trx)活力检测 | 第23页 |
2.4.6 免疫蛋白印迹总蛋白提取 | 第23页 |
2.4.7 免疫蛋白印迹 | 第23页 |
2.4.8 活性氧(ROS)测定 | 第23-24页 |
2.4.9 细胞周期测定 | 第24页 |
2.4.10 硒含量的测定 | 第24页 |
2.4.11 细胞超薄切片的制备 | 第24页 |
2.5 统计方法与数据分析 | 第24-25页 |
3 结果分析 | 第25-39页 |
3.1 亚硒酸钠最大耐受量 | 第25-26页 |
3.2 亚硒酸钠与顺铂抗癌效应的比较 | 第26-28页 |
3.2.1 动物层面效应比较 | 第26-27页 |
3.2.2 细胞层面效应比较 | 第27-28页 |
3.3 H22肝癌细胞的损伤与凋亡 | 第28-29页 |
3.4 腹腔内H22肝癌细胞中SeNPs的形成 | 第29-33页 |
3.4.1 硒的定性分析 | 第29-31页 |
3.4.2 硒的定量分析 | 第31-33页 |
3.5 亚硒酸钠处理后Trx和Grx-GSH系统关键元件不受损伤 | 第33-34页 |
3.6 SeNPs在Trx和Grx耦联GSH系统下的氧化还原循环 | 第34-35页 |
3.7 还原力不足SeNPs产生ROS强于亚硒酸钠 | 第35-39页 |
4 讨论 | 第39-43页 |
4.1 亚硒酸钠是SeNPs的原药 | 第39页 |
4.2 SeNPs的生物活性 | 第39-40页 |
4.3 产生ROS是硒抑癌的根本机制 | 第40页 |
4.4 SeNPs具有高效节能的特性 | 第40页 |
4.5 H22肝癌腹水模型的局限性 | 第40-43页 |
5 结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-48页 |
作者简介 | 第48页 |