| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第1章 综述 | 第8-13页 |
| 1.1 青稞的概述 | 第8页 |
| 1.2 β-葡聚糖的研究现状 | 第8-9页 |
| 1.1.1 β-葡聚糖的提取方法研究 | 第8-9页 |
| 1.1.2 β-葡聚糖的测定方法研究 | 第9页 |
| 1.3 微生物转化法提取β-葡聚糖的研究现状 | 第9-10页 |
| 1.4 化妆品发展趋势 | 第10-11页 |
| 1.4.1 天然活性化妆品的研究现状 | 第10-11页 |
| 1.4.2 β-葡聚糖在化妆品中的利用现状 | 第11页 |
| 1.5 本课题的研究意义与内容 | 第11-13页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第11页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第11-13页 |
| 第2章 微生物转化法提取青稞β-葡聚糖的工艺研究 | 第13-27页 |
| 2.1 试验材料与仪器 | 第13-14页 |
| 2.1.1 青稞原料 | 第13页 |
| 2.1.2 试验菌种 | 第13页 |
| 2.1.3 试验试剂 | 第13页 |
| 2.1.4 主要试验仪器与设备 | 第13-14页 |
| 2.2 实验方法 | 第14-16页 |
| 2.2.1 工艺流程图 | 第14页 |
| 2.2.2 微生物转化法提取青稞β-葡聚糖发酵条件的优化 | 第14-15页 |
| 2.2.3 水提青稞β-葡聚糖条件的优化 | 第15-16页 |
| 2.2.4 青稞β-葡聚糖的初步纯化 | 第16页 |
| 2.2.5 分析方法 | 第16页 |
| 2.3 结果与分析 | 第16-25页 |
| 2.3.1 β-葡聚糖含量的测定 | 第16-17页 |
| 2.3.2 蛋白质含量的测定 | 第17页 |
| 2.3.3 多糖含量的测定 | 第17-18页 |
| 2.3.4 水提青稞β-葡聚糖条件的优化结果 | 第18-20页 |
| 2.3.5 微生物转化法提取青稞β-葡聚糖发酵条件的优化 | 第20-24页 |
| 2.3.6 青稞β-葡聚糖的初步纯化 | 第24-25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-27页 |
| 第3章 青稞β-葡聚糖的初步鉴定 | 第27-32页 |
| 3.1 试验材料与仪器 | 第27页 |
| 3.1.1 试验材料与试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 试验仪器与设备 | 第27页 |
| 3.2 试验方法 | 第27-28页 |
| 3.2.1 青稞β-葡聚糖的制备 | 第27页 |
| 3.2.2 分子量测定[40] | 第27页 |
| 3.2.3 单糖组成的测定 | 第27页 |
| 3.2.4 紫外光谱 | 第27页 |
| 3.2.5 红外光谱[41] | 第27-28页 |
| 3.3 结果与分析 | 第28-31页 |
| 3.3.1 β-葡聚糖分子量的测定 | 第28页 |
| 3.3.2 β-葡聚糖的单糖组成 | 第28-29页 |
| 3.3.3 紫外光谱分析 | 第29-30页 |
| 3.3.4 红外光谱分析 | 第30-31页 |
| 3.4 结论 | 第31-32页 |
| 第4章 青稞β-葡聚糖原液在化妆品中的应用 | 第32-39页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第32页 |
| 4.1.1 青稞β-葡聚糖原液 | 第32页 |
| 4.1.2 试验材料与试剂 | 第32页 |
| 4.1.3 试验仪器与设备 | 第32页 |
| 4.2 试验方法 | 第32-35页 |
| 4.2.1 青稞β-葡聚糖原液成分测定 | 第32-34页 |
| 4.2.2 抗氧化性测定 | 第34-35页 |
| 4.2.3 青稞β-葡聚糖原液在化妆品中的应用 | 第35页 |
| 4.3 结果与分析 | 第35-38页 |
| 4.3.1 青稞β-葡聚糖原液成分测定 | 第35页 |
| 4.3.2 抗氧化测定 | 第35-37页 |
| 4.3.3 青稞β-葡聚糖原液在化妆品中的应用 | 第37-38页 |
| 4.4 结论 | 第38-39页 |
| 第5章 结论与展望 | 第39-40页 |
| 5.1 结论 | 第39页 |
| 5.2 展望 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第47页 |