| 缩略词表 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-26页 |
| 1.1 水稻叶色突变的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.1 水稻叶色突变概述 | 第12页 |
| 1.1.2 水稻叶色突变的发生机制 | 第12页 |
| 1.1.3 水稻叶色突变的研究意义 | 第12-13页 |
| 1.2 植物中的PPR蛋白 | 第13-21页 |
| 1.2.1 PPR家族的进化 | 第13-14页 |
| 1.2.1.1 真核生物的进化中PPR基序可能由TPR演变而来 | 第13页 |
| 1.2.1.2 陆生植物中的PPR家族 | 第13-14页 |
| 1.2.1.3 PPR蛋白与细胞器基因组的共进化 | 第14页 |
| 1.2.2 PPR蛋白对植物生理的影响 | 第14-15页 |
| 1.2.3 PPR蛋白的分子功能 | 第15-20页 |
| 1.2.3.1 P类PPR蛋白促进特异RNA的稳定并确定RNA末端的位置 | 第15-17页 |
| 1.2.3.2 P类PPR蛋白促进或抑制特异mRNAs的翻译 | 第17-18页 |
| 1.2.3.3 P类PPR蛋白促进植物线粒体的RNA裂解 | 第18-19页 |
| 1.2.3.4 PLS类PPR蛋白通常在RNA编辑中作为位点特异性因子 | 第19页 |
| 1.2.3.5 PPR蛋白促进线粒体和叶绿体Ⅱ型内含子的剪接 | 第19-20页 |
| 1.2.3.6 不依赖RNA结合活性的PPR基序功能 | 第20页 |
| 1.2.4 PPR蛋白与RNA的识别和结合 | 第20-21页 |
| 1.3 高等植物叶绿体中的RNA聚合酶 | 第21-22页 |
| 1.3.1 质体编码的RNA聚合酶 | 第21页 |
| 1.3.2 核编码的RNA聚合酶 | 第21-22页 |
| 1.3.3 其它RNA聚合酶 | 第22页 |
| 1.4 RNA编辑 | 第22-26页 |
| 1.4.1 线粒体转录本的RNA编辑 | 第22-24页 |
| 1.4.2 叶绿体转录本的RNA编辑 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-30页 |
| 2.1 材料 | 第26页 |
| 2.1.1 菌株和质粒载体 | 第26页 |
| 2.1.2 植物材料 | 第26页 |
| 2.1.3 其它试剂 | 第26页 |
| 2.2 方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 CISC的亚细胞定位分析 | 第26页 |
| 2.2.2 CISC的表达模式分析 | 第26-27页 |
| 2.2.2.1 常温和低温下苗期CISC的表达模式分析 | 第26-27页 |
| 2.2.2.2 常温下孕穗期CISC的表达模式分析 | 第27页 |
| 2.2.3 相关质体基因的表达分析 | 第27页 |
| 2.2.4 RNA编辑位点分析 | 第27-28页 |
| 2.2.5 CISC基因8bp缺失序列分析 | 第28-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-38页 |
| 3.1 CISC蛋白定位在叶绿体 | 第30页 |
| 3.2 CISC的表达模式 | 第30-33页 |
| 3.2.1 常温和低温下苗期CISC的表达模式 | 第30-32页 |
| 3.2.2 常温下孕穗期CISC的表达模式 | 第32-33页 |
| 3.3 相关质体基因的表达 | 第33-34页 |
| 3.4 Dular中rpoB转录本的RNA编辑存在缺陷 | 第34-36页 |
| 3.5 CISC基因8bp缺失序列分析 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 4.1 CISC参与早期叶绿体发育 | 第38页 |
| 4.2 CISC基因等位缺失可能使水稻对低温更敏感 | 第38页 |
| 4.3 Dular与其它白化突变体的比较 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 附录 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
